中文摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-8页 |
英文缩略词表 | 第12-14页 |
第1章 引言 | 第14-16页 |
第2章 文献综述 | 第16-23页 |
2.1 CAV 与 Apoptin | 第16-17页 |
2.1.1 CAV 及 Apoptin 的来源 | 第16-17页 |
2.1.2 Apoptin 的结构与生物学特性 | 第17页 |
2.2 Apoptin 诱导细胞凋亡 | 第17-19页 |
2.2.1 Apoptin 诱导凋亡的细胞类型 | 第17-18页 |
2.2.2 Apoptin 的穿梭功能和细胞核定位功能 | 第18页 |
2.2.3 Apoptin 的肿瘤特异性磷酸化 | 第18-19页 |
2.2.4 Apoptin 与神经酰胺 | 第19页 |
2.3 Apoptin 诱导细胞凋亡的机制 | 第19-20页 |
2.3.1 Apoptin 与 p53 | 第19-20页 |
2.3.2 Apoptin 与 Bcl-2 | 第20页 |
2.4 Apoptin 与肿瘤治疗 | 第20-22页 |
2.5 结语 | 第22-23页 |
第3章 材料和方法 | 第23-30页 |
3.1 实验材料 | 第23-24页 |
3.1.1 质粒、细菌、细胞及小鼠 | 第23页 |
3.1.2 主要试剂 | 第23页 |
3.1.3 仪器设备 | 第23-24页 |
3.2 实验方法 | 第24-30页 |
3.2.1 表达 Apoptin 的重组减毒沙门氏菌的构建及在 Hep-2 细胞中的表达 | 第24-27页 |
3.2.2 重组减毒沙门氏菌对体外培养的 Hep-2 细胞的抑制作用14 | 第27-28页 |
3.2.3 重组减毒沙门氏菌的体内抑制喉癌作用 | 第28-30页 |
第4章 实验结果 | 第30-42页 |
4.1 表达 Apoptin 的重组减毒沙门氏菌的构建及在 Hep-2 细胞中的表达 | 第30-33页 |
4.1.1 重组质粒的构建与鉴定 | 第30-31页 |
4.1.2 间接免疫荧光检测 | 第31页 |
4.1.3 RT-PCR | 第31-32页 |
4.1.4 Western blot | 第32-33页 |
4.2 重组减毒沙门氏菌对体外培养的 Hep-2 细胞的抑制效应 | 第33-37页 |
4.2.1 感染剂量对重组减毒沙门氏菌作用的影响 | 第33-35页 |
4.2.2 感染时间对重组减毒沙门氏菌作用的影响 | 第35-36页 |
4.2.3 AO/EB 染色分析 | 第36-37页 |
4.3 重组减毒沙门氏菌的体内抑制喉癌作用 | 第37-42页 |
4.3.1 治疗后各组小鼠临床症状和肿瘤生长趋势 | 第37-38页 |
4.3.2 模型动物生存期 | 第38-39页 |
4.3.3 肿瘤倍增时间(TDT)和肿瘤生长延迟时间 (TGD) | 第39-40页 |
4.3.4 细菌分布 | 第40-41页 |
4.3.5 组织切片观察 | 第41-42页 |
第5章 讨论 | 第42-46页 |
第6章 结论 | 第46-47页 |
参考文献 | 第47-53页 |
作者简介及在学期间所取得的科研成果 | 第53-54页 |
致谢 | 第54页 |