| 致谢 | 第5-6页 |
| 摘要 | 第6-9页 |
| Abstract | 第9-12页 |
| 目录 | 第13-17页 |
| 图目录 | 第17-19页 |
| 表目录 | 第19-20页 |
| 第1章 文献综述 | 第20-40页 |
| 1.1 木材的解剖构造 | 第20-21页 |
| 1.1.1 木材的组成 | 第20页 |
| 1.1.2 木材的次生细胞壁 | 第20-21页 |
| 1.2 木材的形成 | 第21-25页 |
| 1.2.1 维管形成层细胞的分裂 | 第21-23页 |
| 1.2.2 木质部细胞的生长过程 | 第23-24页 |
| 1.2.3 木材形成的调控 | 第24-25页 |
| 1.3 木材形成的分子机制研究进展 | 第25-34页 |
| 1.3.1 木质素生物合成途径的酶基因 | 第25-29页 |
| 1.3.2 纤维素生物合成的相关酶基因 | 第29-31页 |
| 1.3.3 参与木材形成的主要转录因子 | 第31-34页 |
| 1.4 高通量测序技术特点与应用 | 第34-36页 |
| 1.4.1 高通量测序技术特点 | 第34-35页 |
| 1.4.2 高通量测序技术在转录组分析上的应用 | 第35-36页 |
| 1.5 光皮桦遗传改良研究现状 | 第36-38页 |
| 1.5.1 常规育种进展 | 第37页 |
| 1.5.2 分子生物学基础相关研究 | 第37-38页 |
| 1.6 本研究意义与技术路线 | 第38-40页 |
| 第2章 光皮桦应拉木的特征及其内源激素分布规律 | 第40-49页 |
| 2.1 材料与方法 | 第40-44页 |
| 2.1.1 植物材料 | 第40-41页 |
| 2.1.2 显微结构观测 | 第41页 |
| 2.1.3 微纤丝角测定 | 第41-42页 |
| 2.1.4 纤维素和木质素含量测定 | 第42页 |
| 2.1.5 蔗糖和果糖含量的测定 | 第42-43页 |
| 2.1.6 内源激素含量的酶联免疫分析 | 第43-44页 |
| 2.1.7 数据分析 | 第44页 |
| 2.2 结果与分析 | 第44-47页 |
| 2.2.1 应拉木和对应木的显微特征 | 第44页 |
| 2.2.2 应拉木的主要理化特性 | 第44-45页 |
| 2.2.3 应拉木形成中蔗糖和果糖含量的变化 | 第45-46页 |
| 2.2.4 应拉木和对应木主要内源激素的分布 | 第46-47页 |
| 2.3 讨论 | 第47-49页 |
| 第3章 光皮桦转录组特征及纤维素和木质素合成候选基因分析 | 第49-80页 |
| 3.1 材料和方法 | 第49-61页 |
| 3.1.1 植物材料 | 第49页 |
| 3.1.2 总RNA的提取与检测 | 第49-51页 |
| 3.1.3 cDNA的合成与测序 | 第51页 |
| 3.1.4 序列拼接与评价 | 第51-52页 |
| 3.1.5 功能注释和分类 | 第52-53页 |
| 3.1.6 纤维素和木质素合成候选基因分析 | 第53页 |
| 3.1.7 基因验证与表达分析 | 第53-61页 |
| 3.2 结果与分析 | 第61-78页 |
| 3.2.1 RNA提取与质量检测 | 第61-62页 |
| 3.2.2 转录组测序产量及拼接 | 第62-65页 |
| 3.2.3 转录组序列的功能注释 | 第65-71页 |
| 3.2.4 纤维素和木质素合成候选基因分析 | 第71-75页 |
| 3.2.5 基因验证和表达分析 | 第75-78页 |
| 3.3 讨论 | 第78-80页 |
| 第4章 光皮桦纤维素合成酶基因的克隆及表达分析 | 第80-97页 |
| 4.1 材料和方法 | 第80-84页 |
| 4.1.1 植物材料 | 第80-81页 |
| 4.1.2 激素、蔗糖处理 | 第81页 |
| 4.1.3 应拉木诱导处理 | 第81页 |
| 4.1.4 总RNA的提取与检测 | 第81页 |
| 4.1.5 BlCesA全长cDNA序列的分离 | 第81页 |
| 4.1.6 BlCesA的生物信息学分析 | 第81-84页 |
| 4.1.7 BlCesA的表达分析 | 第84页 |
| 4.1.8 数据分析 | 第84页 |
| 4.2 结果分析 | 第84-93页 |
| 4.2.1 8个BlCesA全长cDNA序列的分离 | 第84页 |
| 4.2.2 BlCesA全长cDNA的序列分析 | 第84-86页 |
| 4.2.3 BlCesA基因家族的进化树分析 | 第86-89页 |
| 4.2.4 不同器官和组织中BlCesA的表达差异 | 第89-91页 |
| 4.2.5 激素处理对BlCesA表达的影响 | 第91页 |
| 4.2.6 蔗糖渗透胁迫下BlCesA的表达差异 | 第91-93页 |
| 4.2.7 应拉木形成中BlCesA的表达差异 | 第93页 |
| 4.3 讨论 | 第93-97页 |
| 第5章 光皮桦应拉木形成中差异表达基因的分析 | 第97-124页 |
| 5.1 材料与方法 | 第97-101页 |
| 5.1.1 植物材料 | 第97-98页 |
| 5.1.2 总RNA的提取与检测 | 第98页 |
| 5.1.3 cDNA的合成与测序 | 第98页 |
| 5.1.4 表达注释与聚类 | 第98-99页 |
| 5.1.5 代谢途径分析 | 第99页 |
| 5.1.6 基因序列比对与进化分析 | 第99页 |
| 5.1.7 基因共表达分析 | 第99-101页 |
| 5.1.8 基因表达的定量PCR分析 | 第101页 |
| 5.2 结果与分析 | 第101-118页 |
| 5.2.1 数字表达谱测序质量评价 | 第101-102页 |
| 5.2.2 测序读段与参考基因的比对分析 | 第102-104页 |
| 5.2.3 同样品间差异表达基因的数目统计 | 第104页 |
| 5.2.4 应拉木形成相关基因的表达谱分析 | 第104-107页 |
| 5.2.5 应拉木形成中的相关代谢通路分析 | 第107-109页 |
| 5.2.6 纤维素合成候选基因的表达模式 | 第109-112页 |
| 5.2.7 木质素合成相关酶编码基因的表达模式 | 第112-115页 |
| 5.2.8 生长素响应与极性运输相关基因的表达特征 | 第115-117页 |
| 5.2.9 基因表达的验证 | 第117-118页 |
| 5.3 讨论 | 第118-124页 |
| 第6章 总结与展望 | 第124-127页 |
| 6.1 主要研究结论 | 第124-125页 |
| 6.2 主要创新点 | 第125页 |
| 6.3 展望 | 第125-127页 |
| 参考文献 | 第127-144页 |
| 附表1 | 第144-145页 |
| 附表2 | 第145-155页 |
| 附表3 | 第155-160页 |
| 附录 主要试剂的配制 | 第160-162页 |
| 在学期间发表论文及投稿 | 第162页 |
