| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 第一章 引言 | 第20-33页 |
| 1.1 应激 | 第20-21页 |
| 1.2 热应激 | 第21-24页 |
| 1.2.1 热应激对猪生理代谢的影响 | 第21-22页 |
| 1.2.2 热应激对神经内分泌的影响 | 第22页 |
| 1.2.3 热应激对骨骼肌代谢的影响 | 第22页 |
| 1.2.4 热应激引起骨骼肌氧化损伤 | 第22-23页 |
| 1.2.5 热应激与骨骼肌mTOR代谢通路 | 第23页 |
| 1.2.6 热应激与骨骼肌热激蛋白（HSPs） | 第23-24页 |
| 1.3 氧化应激 | 第24-27页 |
| 1.3.1 氧化应激与抗氧化应激 | 第25页 |
| 1.3.2 骨骼肌氧化应激与NF-kB代谢通路 | 第25-26页 |
| 1.3.3 氧化应激与骨骼肌MAPK代谢通路 | 第26页 |
| 1.3.4 氧化应激与骨骼肌AP-1 代谢通路 | 第26-27页 |
| 1.4 氧化应激与肉品质 | 第27页 |
| 1.5 硫辛酸的研究进展 | 第27-31页 |
| 1.5.1 硫辛酸参与能量代谢作用 | 第27-28页 |
| 1.5.2 硫辛酸的抗氧化功能 | 第28-29页 |
| 1.5.3 LA调控Nrf2/Keap1代谢通路 | 第29-31页 |
| 1.6 蛋白质组学研究进展 | 第31-32页 |
| 1.6.1 蛋白质组学的概念 | 第31页 |
| 1.6.2 差异蛋白质组学在研究骨骼肌和肉品质中的应用 | 第31-32页 |
| 1.7 研究内容和目的 | 第32-33页 |
| 第二章 利用蛋白组学技术解析肥育猪骨骼肌响应热应激的机制 | 第33-52页 |
| 2.1 材料与方法 | 第33-35页 |
| 2.1.1 试验主要仪器 | 第33-34页 |
| 2.1.2 试验主要试剂 | 第34页 |
| 2.1.3 试验设计 | 第34页 |
| 2.1.4 日粮和饲养管理 | 第34-35页 |
| 2.2 样品的制备 | 第35-41页 |
| 2.2.1 背最长肌蛋白质提取 | 第36页 |
| 2.2.2 背最长肌蛋白质的溶解和定量 | 第36页 |
| 2.2.3 双向电泳分析（2-DE） | 第36-38页 |
| 2.2.4 凝胶染色和图像分析 | 第38页 |
| 2.2.5 蛋白质谱鉴定 | 第38-39页 |
| 2.2.6 骨骼肌总RNA的提取 | 第39页 |
| 2.2.7 反转录 | 第39页 |
| 2.2.8 实时荧光定量PCR（q-PCR） | 第39-41页 |
| 2.2.9 蛋白质互作分析 | 第41页 |
| 2.3 数据分析 | 第41-42页 |
| 2.4 试验结果与分析 | 第42-49页 |
| 2.4.1 热应激对骨骼肌糖酵解代谢关键酶活的影响 | 第42页 |
| 2.4.2 热应激对骨骼肌AMPK and p-AMPK表达量的影响 | 第42-43页 |
| 2.4.3 骨骼肌响应热应激的差异蛋白质组分析 | 第43页 |
| 2.4.4 部分差异蛋白质点在转录水平的表达情况 | 第43页 |
| 2.4.5 差异蛋白质之间的相互作用 | 第43-49页 |
| 2.5 讨论 | 第49-51页 |
| 2.5.1 热应激引起糖酵解关键酶的活性改变 | 第49页 |
| 2.5.2 热应激引起肥育猪骨骼肌能量代谢途径改变 | 第49-50页 |
| 2.5.3 肥育猪骨骼肌响应热应激的蛋白质组分析 | 第50-51页 |
| 2.6 小结 | 第51-52页 |
| 第三章 热应激引起肝脏氧化应激和细胞凋亡 | 第52-71页 |
| 3.1 材料与方法 | 第52-54页 |
| 3.1.1 试验材料和试验设计 | 第52-53页 |
| 3.1.2 试验方法 | 第53-54页 |
| 3.2 数据统计分析 | 第54页 |
| 3.3 试验结果 | 第54-67页 |
| 3.3.1 肝脏重量和肝脏指数 | 第54页 |
| 3.3.2 肝脏响应热应激和采食量受限的蛋白质组变化 | 第54-63页 |
| 3.3.3 差异蛋白质验证 | 第63-64页 |
| 3.3.4 热应激和采食量受限对肝脏抗氧化酶活性的影响 | 第64-65页 |
| 3.3.5 差异蛋白质的生物信息分析 | 第65-67页 |
| 3.4 讨论 | 第67-70页 |
| 3.4.1 热应激引起肝脏细胞应激响应和免疫应答 | 第67-68页 |
| 3.4.2 热应激影响肝脏细胞氧化还原平衡 | 第68-69页 |
| 3.4.3 热应激诱导肝脏细胞凋亡 | 第69-70页 |
| 3.5 小结 | 第70-71页 |
| 第四章 硫辛酸缓解成肌细胞（C2C12）氧化应激信号通路 | 第71-80页 |
| 4.1 材料和方法 | 第71-74页 |
| 4.1.1 主要试剂 | 第71-72页 |
| 4.1.2 主要设备和仪器 | 第72页 |
| 4.1.3 主要试剂配制 | 第72-73页 |
| 4.1.4 试验方法 | 第73-74页 |
| 4.2 统计学分析 | 第74页 |
| 4.3 试验结果与分析 | 第74-77页 |
| 4.3.1 H_2O_2对C2C12细胞增殖的影响 | 第74页 |
| 4.3.2 LA对氧化应激状态下C2C12细胞的缓解作用 | 第74-75页 |
| 4.3.3 LA对氧化应激状态下C2C12细胞抗氧化酶的影响 | 第75-76页 |
| 4.3.4 LA对氧化应激状态下C2C12细胞P-MAPK和Nrf2表达影响 | 第76-77页 |
| 4.4 讨论 | 第77-78页 |
| 4.4.1 LA提高氧化应激C2C12细胞的抗氧化能力 | 第77-78页 |
| 4.4.2 LA提高氧化应激C2C12细胞的抗氧化能力 | 第78页 |
| 4.4.3 LA Nrf2/Keap1合成抗氧化物酶缓解氧化应激 | 第78页 |
| 4.4.4 LA调控Nrf2的上游蛋白激酶MAPK缓解氧化应激 | 第78页 |
| 4.5 小结 | 第78-80页 |
| 第五章 硫辛酸对氧化应激肥育猪生产性能和血液抗氧化酶的影响 | 第80-86页 |
| 5.1 材料和方法 | 第80-82页 |
| 5.1.1 试验动物及试验设计 | 第80-81页 |
| 5.1.2 试验日粮与饲养管理 | 第81页 |
| 5.1.3 样品采集 | 第81页 |
| 5.1.4 主要仪器 | 第81页 |
| 5.1.5 检测指标和测定方法 | 第81-82页 |
| 5.2 数据统计分析与处理 | 第82页 |
| 5.3 结果 | 第82-84页 |
| 5.3.1 LA对氧化应激猪只生产性能的影响 | 第82-83页 |
| 5.3.2 LA对氧化应激猪只血浆抗氧化相关指标的影响 | 第83-84页 |
| 5.4 讨论 | 第84-85页 |
| 5.4.1 LA对氧化应激猪只生产性能的影响 | 第84页 |
| 5.4.2 LA对氧化应激猪只抗氧化酶和MDA的影响 | 第84-85页 |
| 5.5 小结 | 第85-86页 |
| 第六章 硫辛酸对氧化应激肥育猪肌肉品质的调控机制 | 第86-94页 |
| 6.1 材料与方法 | 第86-87页 |
| 6.1.1 试验主要仪器 | 第86-87页 |
| 6.1.2 试验主要试剂 | 第87页 |
| 6.1.3 试验验设计 | 第87页 |
| 6.2 样品采集及制备 | 第87页 |
| 6.3 测定指标及方法 | 第87-88页 |
| 6.3.1 胴体性状 | 第87页 |
| 6.3.2 肉色和pH | 第87页 |
| 6.3.3 滴水损失 | 第87-88页 |
| 6.3.4 剪切力 | 第88页 |
| 6.3.5 背最长肌肌纤维类型的组成 | 第88页 |
| 6.4 数据统计分析 | 第88-89页 |
| 6.5 试验结果 | 第89-92页 |
| 6.5.1 LA和Diquat对肥育猪胴体形状的影响 | 第89页 |
| 6.5.2 LA和Diquat对肥育猪背长肌肉品质性状的影响 | 第89-90页 |
| 6.5.3 LA和Diquat对肥育猪背最长肌肌纤维类型的影响 | 第90-91页 |
| 6.5.4 LA和Diquat对背最长肌MAPK信号通路蛋白表达的影响 | 第91页 |
| 6.5.5 LA和Diquat对背最长肌Nrf2/ Keap1表达的影响 | 第91页 |
| 6.5.6 LA和Diquat对背最长肌SOD酶活和表达的影响 | 第91-92页 |
| 6.6 讨论 | 第92-93页 |
| 6.7 小结 | 第93-94页 |
| 第七章 全文总结 | 第94-96页 |
| 7.1 结论 | 第94页 |
| 7.2 本论文创新点 | 第94页 |
| 7.3 下一步研究展望 | 第94-96页 |
| 参考文献 | 第96-108页 |
| 致谢 | 第108-109页 |
| 作者简历 | 第109页 |
