| 摘要 | 第6-7页 |
| ABSTRACT | 第7页 |
| 英文缩略表 | 第11-12页 |
| 第一章 引言 | 第12-18页 |
| 1.1 小麦育种现状及小麦野生近缘植物研究概况 | 第12-13页 |
| 1.1.1 我国小麦育种现状及小麦改良中遇到的问题 | 第12页 |
| 1.1.2 野生近缘植物在小麦育种中的应用 | 第12-13页 |
| 1.1.3 冰草属的研究概况 | 第13页 |
| 1.2 异源附加系、代换系的产生及检测 | 第13-15页 |
| 1.2.1 远缘杂交中异源附加系和代换系的获得及应用 | 第13-14页 |
| 1.2.2 小麦异源附加系（代换系）检测的研究概况 | 第14-15页 |
| 1.3 易位系的创制及检测 | 第15-16页 |
| 1.3.1 异源易位系的人工诱导方法 | 第15-16页 |
| 1.3.2 易位系外源片段的检测 | 第16页 |
| 1.4 本研究的目的、意义和技术路线 | 第16-18页 |
| 1.4.1 本研究的目的和意义 | 第16-17页 |
| 1.4.2 本研究的技术路线 | 第17-18页 |
| 第二章 普通小麦背景下多条P染色体的检测及分析 | 第18-28页 |
| 2.1 实验材料 | 第18页 |
| 2.2 实验方法 | 第18-20页 |
| 2.2.1 全基因组DNA的提取方法 | 第18页 |
| 2.2.2 质粒DNA的提取和纯化 | 第18页 |
| 2.2.3 细胞学材料准备 | 第18-19页 |
| 2.2.4 基因组原位杂交（GISH）及荧光原位杂交（FISH） | 第19页 |
| 2.2.5 小麦染色体特异SSR标记检测 | 第19-20页 |
| 2.2.6 冰草染色体特异EST-STS分子标记检测 | 第20页 |
| 2.2.7 农艺性状调查 | 第20页 |
| 2.3 结果与分析 | 第20-26页 |
| 2.3.1 衍生系II-13及II-23的GISH检测 | 第20-21页 |
| 2.3.2 衍生系II-13及II-23的FISH检测 | 第21-22页 |
| 2.3.3 衍生系的小麦SSR标记分析 | 第22-23页 |
| 2.3.4 衍生系的冰草特异EST-STS标记分析 | 第23-24页 |
| 2.3.5 农艺性状分析 | 第24-26页 |
| 2.4 讨论 | 第26-28页 |
| 2.4.1 新鉴定出的小麦-冰草异源代换-附加系的理论和应用价值 | 第26页 |
| 2.4.2 外源染色体与小麦染色体的部分同源群分析 | 第26-27页 |
| 2.4.3 染色体结构重排 | 第27页 |
| 2.4.4 旗叶窄小及株型紧凑对构建理想株型的贡献 | 第27-28页 |
| 第三章 普通小麦-冰草衍生系后代的分子细胞学检测 | 第28-33页 |
| 3.1 实验材料 | 第28页 |
| 3.2 实验方法 | 第28页 |
| 3.2.1 全基因组DNA的提取 | 第28页 |
| 3.2.2 染色体制片及原位杂交检测 | 第28页 |
| 3.2.3 分子标记检测 | 第28页 |
| 3.3 结果与分析 | 第28-31页 |
| 3.3.1 BC_1F_2世代的GISH检测 | 第28-29页 |
| 3.3.2 BC_1F_2及BC_2世代的STS标记检测 | 第29-30页 |
| 3.3.3 衍生系后代染色体的分离 | 第30-31页 |
| 3.4 讨论 | 第31-33页 |
| 第四章 普通小麦-冰草 2P易位系的创制及检测 | 第33-40页 |
| 4.1 实验材料 | 第33页 |
| 4.2 实验方法 | 第33-34页 |
| 4.2.1 易位系诱导方法 | 第33页 |
| 4.2.2 全基因组DNA的提取方法 | 第33页 |
| 4.2.3 小麦染色体制片及原位杂交检测 | 第33页 |
| 4.2.4 分子标记检测 | 第33-34页 |
| 4.3 结果与分析 | 第34-38页 |
| 4.3.1 小麦-冰草 2P附加系的细胞学检测 | 第34页 |
| 4.3.2 小麦-冰草 2P易位系的类型及频率 | 第34-36页 |
| 4.3.3 小麦-冰草 2P附加系及易位系的STS分子标记检测 | 第36-38页 |
| 4.3.4 白粉病调查 | 第38页 |
| 4.4 讨论 | 第38-40页 |
| 第五章 全文结论 | 第40-41页 |
| 参考文献 | 第41-47页 |
| 致谢 | 第47-48页 |
| 作者简历 | 第48页 |
