中文摘要 | 第8-10页 |
Abstract | 第10-11页 |
1 前言 | 第12-28页 |
1.1 沙门氏菌的病原学 | 第13-20页 |
1.1.1 形态、染色 | 第13-14页 |
1.1.2 培养特性、生化特性 | 第14-17页 |
1.1.3 对理化因素的抵抗力 | 第17-18页 |
1.1.4 毒力因子 | 第18-20页 |
1.2 沙门氏菌流行病学 | 第20-21页 |
1.3 临床症状 | 第21-22页 |
1.3.1 鸡白痢 | 第21页 |
1.3.2 禽伤寒 | 第21-22页 |
1.3.3 禽副伤寒 | 第22页 |
1.4 病理变化 | 第22-24页 |
1.5 沙门氏菌检测方法 | 第24-25页 |
1.5.1 传统检测方法 | 第24页 |
1.5.2 免疫分析技术 | 第24页 |
1.5.3 分子生物学技术 | 第24-25页 |
1.6 沙门氏菌的净化及防控 | 第25-27页 |
1.6.1 综合防制 | 第25页 |
1.6.2 种鸡群沙门氏菌的净化 | 第25-26页 |
1.6.3 药物控制和治疗 | 第26页 |
1.6.4 疫苗的应用 | 第26-27页 |
1.7 本研究的目的及意义 | 第27-28页 |
2 材料与方法 | 第28-35页 |
2.1 试验材料 | 第28页 |
2.1.1 主要试剂和试剂盒 | 第28页 |
2.1.2 主要使用的培养基 | 第28页 |
2.1.3 实验主要使用的单因子血清和抗原 | 第28页 |
2.1.4 实验中的样品来源 | 第28页 |
2.2 方法 | 第28-35页 |
2.2.1 琼脂平板及肉汤培养基的配制 | 第28-29页 |
2.2.2 沙门氏菌平板凝集实验方法 | 第29页 |
2.2.3 雏鸡、毛蛋微生物检测接种实验方法 | 第29页 |
2.2.4 环境性样本的沙门氏菌扩增方法 | 第29-30页 |
2.2.5 沙门氏菌的分离纯化增菌及生化鉴定 | 第30-31页 |
2.2.6 单因子血清凝集法鉴定沙门氏菌 | 第31-32页 |
2.2.7 样品DNA的提取 | 第32-33页 |
2.2.8 引物及PCR反应体系 | 第33-34页 |
2.2.9 用ELLISA方法测定血清中沙门氏菌B+D群菌属抗体的实验方法 | 第34-35页 |
3 结果 | 第35-57页 |
3.1 流行病学调查结果 | 第35-42页 |
3.1.1 沙门氏菌分离情况流行病学调查结果 | 第35-36页 |
3.1.2 平板凝集实验流行病学统计结果 | 第36-40页 |
3.1.3 8倍稀释平板凝集阳性血清与ELISA检测、临床相关性 | 第40-42页 |
3.2 沙门氏菌分离鉴定及分型实验结果 | 第42-49页 |
3.2.1 沙门氏菌分离纯化实验结果 | 第42-44页 |
3.2.2 不同扩增与鉴别培养基的筛选 | 第44-46页 |
3.2.3 PCR鉴定实验结果 | 第46-47页 |
3.2.4 生化反应实验结果 | 第47-49页 |
3.2.5 单因子血清凝集实验结果 | 第49页 |
3.3 2012-2015年分离及鉴定沙门氏菌情况 | 第49-52页 |
3.4 沙门氏菌阳性群对种鸡死淘的影响 | 第52页 |
3.5 沙门氏菌感染对雏鸡质量的影响 | 第52-55页 |
3.5.1 不同饲养模式下雏鸡中沙门氏菌的分离率 | 第52-53页 |
3.5.2 沙门氏菌感染对后代雏鸡造成的影响跟踪 | 第53-55页 |
3.6 沙门菌的控制措施 | 第55-57页 |
4 讨论 | 第57-60页 |
4.1 沙门氏菌的分离 | 第58页 |
4.2 与种鸡群平板凝集阳性率对鸡群净化的评估 | 第58-59页 |
4.3 血清8倍稀释方法对鸡群感染状况的评估可行性 | 第59页 |
4.4 沙门氏菌净化措施及净化控制效果 | 第59-60页 |
5 结论 | 第60-61页 |
参考文献 | 第61-64页 |
致谢 | 第64页 |