| 中文摘要 | 第12-13页 |
| 英文摘要 | 第13-14页 |
| 第一章 绪论 | 第15-23页 |
| 1.1 葫芦科植物研究概况 | 第15-16页 |
| 1.1.1 葫芦科植物多糖研究概况 | 第15-16页 |
| 1.1.2 苦瓜多糖研究概况 | 第16页 |
| 1.2 多糖的降糖活性研究 | 第16-20页 |
| 1.2.1 糖尿病简介 | 第16-17页 |
| 1.2.2 多糖的降血糖机制 | 第17-19页 |
| 1.2.3 糖尿病动物模型的建立 | 第19-20页 |
| 1.2.4 糖尿病细胞模型的建立 | 第20页 |
| 1.3 多糖的分离纯化和结构分析 | 第20-21页 |
| 1.3.1 多糖的提取分离和纯化 | 第20-21页 |
| 1.3.2 多糖的成分检测 | 第21页 |
| 1.3.3 多糖分子量测定 | 第21页 |
| 1.3.4 多糖的结构测定 | 第21页 |
| 1.4 本课题的研究意义和研究内容 | 第21-23页 |
| 1.4.1 研究意义 | 第21-22页 |
| 1.4.2 研究内容 | 第22-23页 |
| 第二章 苦瓜多糖的制备与分离纯化 | 第23-30页 |
| 2.1 材料与试剂 | 第23页 |
| 2.2 仪器和设备 | 第23页 |
| 2.3 试验方法 | 第23-25页 |
| 2.3.1 苦瓜粗多糖的制备 | 第23-24页 |
| 2.3.2 多糖含量测定(苯酚-硫酸法) | 第24页 |
| 2.3.3 蛋白含量测定(G-250法) | 第24页 |
| 2.3.4 多糖纯度鉴定 | 第24页 |
| 2.3.5 DEAE-52柱层析 | 第24-25页 |
| 2.3.6 抗氧化活性检测 | 第25页 |
| 2.3.7 相对分子量测定 | 第25页 |
| 2.4 结果与分析 | 第25-28页 |
| 2.4.1 苦瓜粉粒径分析 | 第25-26页 |
| 2.4.2 苦瓜中粗多糖提取率 | 第26页 |
| 2.4.3 多糖含量测定结果 | 第26页 |
| 2.4.4 蛋白含量测定结果 | 第26页 |
| 2.4.5 多糖纯度鉴定结果 | 第26-27页 |
| 2.4.6 DEAE-52柱层析分离结果 | 第27页 |
| 2.4.7 抗氧化活性测定结果 | 第27页 |
| 2.4.8 相对分子质量测定结果 | 第27-28页 |
| 2.5 结论与讨论 | 第28页 |
| 2.6 小结 | 第28-30页 |
| 第三章 苦瓜多糖的体外抗氧化活性研究 | 第30-34页 |
| 3.1 材料与试剂 | 第30页 |
| 3.1.1 材料 | 第30页 |
| 3.1.2 试剂 | 第30页 |
| 3.2 仪器和设备 | 第30页 |
| 3.3 试验方法 | 第30-31页 |
| 3.3.1 对超氧阴离子清除率的测定(NBT光还原法) | 第30-31页 |
| 3.3.2 对羟基自由基清除率的测定(Fenton法) | 第31页 |
| 3.3.3 对DPPH清除率的测定 | 第31页 |
| 3.4 结果与分析 | 第31-33页 |
| 3.4.1 对超氧阴离子自由基的清除作用 | 第31-32页 |
| 3.4.2 对羟基自由基的清除作用 | 第32页 |
| 3.4.3 对DPPH自由基的清除作用 | 第32-33页 |
| 3.5 结论与讨论 | 第33页 |
| 3.6 小结 | 第33-34页 |
| 第四章 苦瓜多糖对Ⅱ型糖尿病的降糖活性研究 | 第34-51页 |
| 4.1 材料和试剂 | 第34页 |
| 4.2 仪器与设备 | 第34-35页 |
| 4.3 试验方法 | 第35-42页 |
| 4.3.1. 溶液的配制 | 第35-37页 |
| 4.3.2 细胞培养及诱导分化 | 第37页 |
| 4.3.3 油红O染色 | 第37页 |
| 4.3.4 脂肪细胞胰岛素抵抗模型建立及模型维持情况 | 第37页 |
| 4.3.5 MTT试验 | 第37-38页 |
| 4.3.6 苦瓜多糖降糖活性组分的筛选 | 第38页 |
| 4.3.7 Ⅱ型糖尿病大鼠模型模型试验 | 第38-39页 |
| 4.3.8 血糖的测定 | 第39页 |
| 4.3.9 糖耐量(AUC)试验 | 第39页 |
| 4.3.10 组织中总蛋白质浓度的测定 | 第39页 |
| 4.3.11 TG的测定 | 第39-40页 |
| 4.3.12 SOD活性测定 | 第40页 |
| 4.3.13 GSH-Px活性 | 第40-41页 |
| 4.3.14 MDA含量 | 第41-42页 |
| 4.4 结果与分析 | 第42-49页 |
| 4.4.1 细胞的诱导分化结果 | 第42-43页 |
| 4.4.2 油红O染色结果 | 第43页 |
| 4.4.3 胰岛素抵抗模型的建立 | 第43页 |
| 4.4.4 胰岛素抵抗模型后期维持的检测 | 第43-44页 |
| 4.4.5 MTT检测 | 第44页 |
| 4.4.6 苦瓜多糖降糖活性组分的检测筛选 | 第44-45页 |
| 4.4.7 MCPⅡ对型糖尿病大鼠体重的影响 | 第45页 |
| 4.4.8 MCPⅡ对型糖尿病大鼠空腹血糖的影响 | 第45-46页 |
| 4.4.9 MCPⅡ对Ⅱ型糖尿病大鼠糖耐量的影响 | 第46页 |
| 4.4.10 MCPⅡ对Ⅱ型糖尿病大鼠肝脏蛋白含量的影响 | 第46-47页 |
| 4.4.11 MCPⅡ对大鼠肝脏中甘油三酯(TG)含量的影响 | 第47页 |
| 4.4.12 MCPⅡ对Ⅱ型糖尿病大鼠肝脏中SOD活性的影响 | 第47-48页 |
| 4.4.13 MCPⅡ对Ⅱ型糖尿病大鼠肝脏中GSH-Px活性的影响 | 第48页 |
| 4.4.14 MCPⅡ对Ⅱ型糖尿病大鼠肝脏中MDA含量的影响 | 第48-49页 |
| 4.5 结论与讨论 | 第49-50页 |
| 4.6 小结 | 第50-51页 |
| 第五章 苦瓜多糖活性成分的结构分析 | 第51-57页 |
| 5.1 材料与试剂 | 第51页 |
| 5.2 仪器和设备 | 第51页 |
| 5.3 试验方法 | 第51-52页 |
| 5.3.1 单糖组成分析 | 第51-52页 |
| 5.3.2 气相色谱-质谱分析 | 第52页 |
| 5.3.3 NMR检测 | 第52页 |
| 5.4 结果与分析 | 第52-55页 |
| 5.4.1 单糖组成分析结果 | 第52-53页 |
| 5.4.2 结构分析 | 第53-55页 |
| 5.5 结论与讨论 | 第55-56页 |
| 5.6 小结 | 第56-57页 |
| 第六章 结论 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-63页 |
| 致谢 | 第63-64页 |
| 攻读学位期间发表学术论文 | 第64页 |
