| 致谢 | 第4-5页 |
| 中文摘要 | 第5-10页 |
| 英文摘要 | 第10-14页 |
| 缩略词表 | 第15-18页 |
| 1 前言 | 第18-21页 |
| 2 材料和方法 | 第21-28页 |
| 2.1 实验材料 | 第21-23页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第21页 |
| 2.1.2 实验菌株 | 第21页 |
| 2.1.3 主要试剂和来源 | 第21-22页 |
| 2.1.4 试剂配方 | 第22-23页 |
| 2.1.5 主要仪器设备 | 第23页 |
| 2.2 实验方法 | 第23-28页 |
| 2.2.1 大肠埃希菌CFT073野生株(TcpC~(wt)及基因敲除株(TcpC~(del))的培养 | 第23页 |
| 2.2.2 肾盂肾炎小鼠模型的建立 | 第23-24页 |
| 2.2.3 石蜡切片的制作与HE染色 | 第24页 |
| 2.2.4 肾脏组织匀浆细菌计数 | 第24页 |
| 2.2.5 肾脏细胞悬液的制备 | 第24-25页 |
| 2.2.6 免疫磁珠分选肾脏DCs | 第25-26页 |
| 2.2.7 流式细胞术分析 | 第26页 |
| 2.2.8 细胞培养 | 第26页 |
| 2.2.9 ELISA检测细胞因子含量 | 第26页 |
| 2.2.10 分离脾脏中CD8~+T细胞 | 第26-27页 |
| 2.2.11 分离脾脏中CD4~+T细胞 | 第27页 |
| 2.2.12 DCs分别与大肠杆菌CFT073野生株和tcpc基因敲除株共培养 | 第27页 |
| 2.2.13 OVA抗原肽特异性T细胞(CD8~+T和CD4~+T细胞)的增殖活化反应 | 第27-28页 |
| 2.2.14 统计处理 | 第28页 |
| 3 实验结果 | 第28-36页 |
| 3.1 肾盂肾炎小鼠模型的验证 | 第28-31页 |
| 3.1.1 肾脏组织匀浆细菌培养 | 第28-29页 |
| 3.1.2 肾脏组织石蜡切片HE染色结果 | 第29-30页 |
| 3.1.3 肾脏组织匀浆中细胞因子含量的变化 | 第30-31页 |
| 3.2 TcpC对肾脏DCs表型的影响 | 第31-33页 |
| 3.3 TcpC对肾脏DCs功能的影响 | 第33-36页 |
| 3.3.1 TcpC对肾脏DCs分泌细胞因子的影响 | 第33-34页 |
| 3.3.2 TcpC对DCs抗原提呈功能的影响 | 第34-36页 |
| 4 讨论 | 第36-40页 |
| 参考文献 | 第40-44页 |
| 综述 | 第44-52页 |
| References | 第49-52页 |
| 作者简历与攻读学位期间取得的科研成果 | 第52页 |
