摘要 | 第4-6页 |
ABSTRACT | 第6-7页 |
缩写词(Abbreviation) | 第8-12页 |
1 前言 | 第12-24页 |
1.1 植物的衰老 | 第12-19页 |
1.1.1 植物衰老的概述 | 第12页 |
1.1.2 植物叶片的衰老 | 第12-13页 |
1.1.3 影响衰老的植物激素 | 第13-15页 |
1.1.4 影响衰老的其他内源因素 | 第15-16页 |
1.1.5 影响衰老的非生物因素 | 第16页 |
1.1.6 衰老叶片中的细胞程序性死亡 | 第16-17页 |
1.1.7 衰老叶片细胞内部生理生化的改变 | 第17-18页 |
1.1.8 衰老叶片中叶绿素的降解 | 第18-19页 |
1.2 光合作用 | 第19-20页 |
1.2.1 光反应 | 第19-20页 |
1.2.2 暗反应 | 第20页 |
1.3 叶绿素荧光 | 第20-24页 |
1.3.1 叶绿素荧光的产生 | 第20-21页 |
1.3.2 叶绿荧光诱导曲线 | 第21-22页 |
1.3.3 叶绿荧光参数的意义 | 第22-24页 |
2 立题依据 | 第24-26页 |
3 材料与方法 | 第26-40页 |
3.1 常用仪器 | 第26页 |
3.2 实验材料、菌株、载体 | 第26-27页 |
3.3 实验药品、试剂 | 第27页 |
3.4 培养基及溶液的配制 | 第27-29页 |
3.4.1 常用培养基的配制 | 第27-28页 |
3.4.2 溶液的配制 | 第28-29页 |
3.4.3 常用抗生素的配置 | 第29页 |
3.5 实验方法 | 第29-40页 |
3.5.1 拟南芥的培养 | 第29-30页 |
3.5.2 暗处理 | 第30页 |
3.5.3 拟南芥杂交 | 第30-31页 |
3.5.4 定位克隆 | 第31-33页 |
3.5.5 拟南芥DNA的提取 | 第33页 |
3.5.6 拟南芥RNA的提取 | 第33-34页 |
3.5.7 反转录制备拟南芥cDNA | 第34页 |
3.5.8 目的基因的回收和纯化 | 第34-35页 |
3.5.9 构建载体所用引物 | 第35页 |
3.5.10 载体构建 | 第35-37页 |
3.5.11 大肠杆菌DH5α 感受态的制备 | 第37页 |
3.5.12 大肠杆菌感受态的热击转化 | 第37页 |
3.5.13 重组菌落与质粒的鉴定 | 第37-38页 |
3.5.14 叶绿素含量的测定 | 第38页 |
3.5.15 MDA含量的测定 | 第38页 |
3.5.16 瞬转拟南芥原生质体 | 第38-40页 |
4 结果与分析 | 第40-56页 |
4.1 突变体的获得 | 第40页 |
4.2 突变体的遗传分析 | 第40-42页 |
4.2.1 突变基因显隐性的确定 | 第40-41页 |
4.2.2 突变表型的分离比 | 第41-42页 |
4.3 突变体E61的定位克隆 | 第42-44页 |
4.3.1 用于定位克隆的F2代分离群体的构建 | 第42页 |
4.3.2 基因定位结果 | 第42-43页 |
4.3.4 猜基因结果 | 第43-44页 |
4.4 突变体E61的回补结果 | 第44-46页 |
4.4.1 突变体E61回补载体E61::pCAMBIA1300-COM的构建 | 第44-45页 |
4.4.2 突变体E61回补转基因植株的获得及筛选 | 第45页 |
4.4.3 突变体E61回补植株的表型分析 | 第45-46页 |
4.5 突变基因AT1G73470的超表达结果 | 第46-47页 |
4.6 突变基因AT1G73470的组织定位结果 | 第47-48页 |
4.6.1 组织定位载体E61::pCAMBIA1391的构建 | 第47页 |
4.6.2 GUS染色结果 | 第47-48页 |
4.7 突变基因AT1G73470的亚细胞定位 | 第48-50页 |
4.7.1 E61::pHBT-GFP-NOS载体的构建和瞬转 | 第48-49页 |
4.7.2 目的基因的瞬转与线粒体共染色 | 第49-50页 |
4.8 ABA处理下的萌发率差异 | 第50页 |
4.9 突变体E61的发育表型 | 第50-51页 |
4.10 叶绿素含量的测定 | 第51-52页 |
4.11 可溶性糖的测定 | 第52-53页 |
4.12 MDA含量的测定 | 第53页 |
4.13 暗处理 | 第53-56页 |
5 讨论 | 第56-58页 |
结论 | 第58-60页 |
参考文献 | 第60-65页 |
致谢 | 第65-66页 |