| 摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 1 绪论 | 第9-23页 |
| 1.1 壳聚糖 | 第9-18页 |
| 1.1.1 壳聚糖简介 | 第9-10页 |
| 1.1.1.1 壳聚糖的来源 | 第9-10页 |
| 1.1.1.2 壳聚糖的理化性质 | 第10页 |
| 1.1.2 壳聚糖的降解方法 | 第10-16页 |
| 1.1.2.1 物理方法 | 第10-12页 |
| 1.1.2.1.1 γ-射线辐射降解 | 第10-11页 |
| 1.1.2.1.2 超声波降解 | 第11-12页 |
| 1.1.2.1.3 微波法 | 第12页 |
| 1.1.2.1.4 光降解法 | 第12页 |
| 1.1.2.2 化学方法 | 第12-14页 |
| 1.1.2.2.1 酸降解 | 第12-13页 |
| 1.1.2.2.2 氧化降解 | 第13-14页 |
| 1.1.2.3 生物方法 | 第14-16页 |
| 1.1.2.3.1 酶降解法 | 第15页 |
| 1.1.2.3.2 糖基转移法 | 第15-16页 |
| 1.1.3 壳聚糖的应用 | 第16-18页 |
| 1.1.3.1 在医药中的应用 | 第16-17页 |
| 1.1.3.2 在食品领域的应用 | 第17页 |
| 1.1.3.3 在农业中的应用 | 第17-18页 |
| 1.1.3.4 在废水处理中的应用 | 第18页 |
| 1.2 纳米技术 | 第18-20页 |
| 1.2.1 纳米药物简介 | 第18-20页 |
| 1.2.1.1 纳米囊和纳米球 | 第18-19页 |
| 1.2.1.2 纳米脂质体 | 第19页 |
| 1.2.1.3 固体脂质纳米粒 | 第19页 |
| 1.2.1.4 微乳 | 第19页 |
| 1.2.1.5 聚合物胶束 | 第19-20页 |
| 1.3 立题背景及意义 | 第20-21页 |
| 1.4 研究课题的提出及内容 | 第21-22页 |
| 1.5 论文实验设计 | 第22-23页 |
| 2 低相对分子质量壳聚糖的制备及表征 | 第23-41页 |
| 2.1 引言 | 第23页 |
| 2.2 实验部分 | 第23-25页 |
| 2.2.1 试剂和仪器 | 第23-24页 |
| 2.2.2 降解方法 | 第24-25页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第25-40页 |
| 2.3.1 脱乙酰度的测定 | 第25-28页 |
| 2.3.1.1 方法 | 第26-27页 |
| 2.3.1.2 数据与分析 | 第27-28页 |
| 2.3.2 相对分子质量的测定 | 第28-37页 |
| 2.3.2.1 方法 | 第29-30页 |
| 2.3.2.2 数据与分析 | 第30-37页 |
| 2.3.2.2.1 原料CS相对分子质量 | 第30-32页 |
| 2.3.2.2.2 CS_(0.5h)相对分子质量 | 第32-33页 |
| 2.3.2.2.3 CS_(1h)相对分子质量 | 第33-34页 |
| 2.3.2.2.4 CS_(3h)相对分子质量 | 第34-36页 |
| 2.3.2.2.5 CS_(5h)相对分子质量 | 第36-37页 |
| 2.3.3 不同相对分子质量壳聚糖红外光谱 | 第37-40页 |
| 2.4 本章小结 | 第40-41页 |
| 3 壳聚糖-乙酰水杨酸纳米粒子的制备 | 第41-49页 |
| 3.1 引言 | 第41页 |
| 3.2 实验部分 | 第41-44页 |
| 3.2.1 试剂与器材 | 第41-42页 |
| 3.2.2 方法 | 第42-44页 |
| 3.2.2.1 壳聚糖-乙酰水杨酸纳米粒子的制备 | 第42-43页 |
| 3.2.2.2 壳聚糖-乙酰水杨酸纳米粒子的表征 | 第43-44页 |
| 3.2.2.2.1 红外光谱(FT-IR)检测 | 第43页 |
| 3.2.2.2.2 ~1H NMR测定 | 第43页 |
| 3.2.2.2.3 壳聚糖-乙酰水杨酸纳米粒子形态学测定 | 第43页 |
| 3.2.2.2.4 壳聚糖-乙酰水杨酸纳米粒子粒径分布的测定 | 第43-44页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第44-48页 |
| 3.3.1 壳聚糖-乙酰水杨酸纳米粒子的红外分析 | 第44-45页 |
| 3.3.2 壳聚糖-乙酰水杨酸纳米粒子的~1H NMR分析 | 第45页 |
| 3.3.3 壳聚糖-乙酰水杨酸纳米粒子扫描电镜分析 | 第45-47页 |
| 3.3.4 空白纳米粒子及载药纳米粒子的透射电镜分析 | 第47-48页 |
| 3.3.5 载药纳米粒子粒径和Zeta电位分析 | 第48页 |
| 3.4 本章小结 | 第48-49页 |
| 4 壳聚糖载药纳米粒子制备条件的优化 | 第49-61页 |
| 4.1 引言 | 第49页 |
| 4.2 实验部分 | 第49-59页 |
| 4.2.1 试剂与设备 | 第49-50页 |
| 4.2.1.1 药品 | 第49页 |
| 4.2.1.2 设备及仪器 | 第49-50页 |
| 4.2.2 实验过程 | 第50-51页 |
| 4.2.2.1 壳聚糖-乙酰水杨酸纳米粒子的制备 | 第50-51页 |
| 4.2.2.2 标准曲线的绘制 | 第51页 |
| 4.2.2.3 CS-ASA载药量和包封率测定 | 第51页 |
| 4.2.3 结果与讨论 | 第51-59页 |
| 4.2.3.1 标准曲线 | 第51-52页 |
| 4.2.3.2 不同实验条件对CS-ASA纳米粒子包封率和载药量的影响 | 第52-56页 |
| 4.2.3.2.1 pH值对CS-ASA纳米粒子包封率和载药量的影响 | 第52-53页 |
| 4.2.3.2.2 CS相对分子质量对CS-ASA纳米粒子包封率和载药量的影响 | 第53-54页 |
| 4.2.3.2.3 CS与TPP用量比对CS-ASA纳米粒子包封率和载药量的影响 | 第54-55页 |
| 4.2.3.2.4 药载比对CS-ASA纳米粒子包封率和载药量的影响 | 第55-56页 |
| 4.2.3.2.5 反应时间对CS-ASA纳米粒子包封率和载药量的影响 | 第56页 |
| 4.2.3.3 正交试验优选载药纳米粒子制备工艺 | 第56-59页 |
| 4.2.3.4 重现性实验 | 第59页 |
| 4.3 本章小结 | 第59-61页 |
| 5 壳聚糖载药纳米粒子的体外释药实验 | 第61-71页 |
| 5.1 引言 | 第61页 |
| 5.2 试剂和仪器 | 第61-62页 |
| 5.2.1 试剂 | 第61页 |
| 5.2.2 设备及仪器 | 第61-62页 |
| 5.3 实验方法 | 第62-63页 |
| 5.3.1 体外释药实验 | 第62页 |
| 5.3.1.1 PBS缓冲液的配制 | 第62页 |
| 5.3.1.2 人工胃液的配制 | 第62页 |
| 5.3.1.3 体外释药实验 | 第62页 |
| 5.3.2 标准曲线的绘制 | 第62-63页 |
| 5.4 结果与讨论 | 第63-70页 |
| 5.4.1 不同条件下的标准曲线 | 第63-64页 |
| 5.4.2 CS-ASA载药纳米粒子的体外释药曲线 | 第64-70页 |
| 5.5 本章小结 | 第70-71页 |
| 结论 | 第71-73页 |
| 参考文献 | 第73-81页 |
| 致谢 | 第81-83页 |
| 攻读学位期间发表的论文 | 第83-84页 |
