| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 第一章 绪论 | 第15-25页 |
| 1.1 甲状腺癌 | 第15页 |
| 1.2 绿茶 | 第15-17页 |
| 1.2.1 绿茶简介 | 第15页 |
| 1.2.2 绿茶的功能 | 第15-16页 |
| 1.2.3 EGCG与慢性疾病 | 第16页 |
| 1.2.4 EGCG与癌症 | 第16-17页 |
| 1.3 凋亡 | 第17-19页 |
| 1.3.1 凋亡简介 | 第17-18页 |
| 1.3.2 EGCG与凋亡 | 第18-19页 |
| 1.4 ROS | 第19-21页 |
| 1.4.1 ROS简介 | 第19-20页 |
| 1.4.2 EGCG与ROS | 第20-21页 |
| 1.5 自噬 | 第21-22页 |
| 1.5.1 自噬简介 | 第21页 |
| 1.5.2 EGCG与自噬 | 第21-22页 |
| 1.6 细胞周期 | 第22-23页 |
| 1.6.1 细胞周期简介 | 第22页 |
| 1.6.2 EGCG与细胞周期 | 第22-23页 |
| 1.7 EGCG与信号分子调节 | 第23-25页 |
| 第二章 研究目的、内容、方法、意义及实验方案设计 | 第25-27页 |
| 2.1 研究目的 | 第25页 |
| 2.2 研究内容 | 第25页 |
| 2.3 研究方法、技术 | 第25页 |
| 2.4 研究意义 | 第25-26页 |
| 2.5 实验方案设计 | 第26-27页 |
| 第三章 实验材料与方法 | 第27-41页 |
| 3.1 材料 | 第27-30页 |
| 3.1.1 细胞株 | 第27页 |
| 3.1.2 主要试剂 | 第27-29页 |
| 3.1.3 主要仪器设备和耗材 | 第29-30页 |
| 3.2 实验方法 | 第30-40页 |
| 3.2.1 甲状腺乳头状癌细胞TPC-1 的培养 | 第30-33页 |
| 3.2.1.1 细胞培养所需试剂及其配置方法 | 第30-33页 |
| 3.2.2 MTT法检测W3细胞增殖活性 | 第33-34页 |
| 3.2.2.1 检测EGCG对TPC-1 细胞生长的影响 | 第33-34页 |
| 3.2.3 细胞凋亡实验 | 第34-35页 |
| 3.2.4 Hoechst33242染色 | 第35页 |
| 3.2.5 细胞内ROS检测 | 第35页 |
| 3.2.6 细胞周期检测 | 第35-36页 |
| 3.2.7 免疫印迹实验（Western blot） | 第36-40页 |
| 3.2.7.1 免疫印迹所需试剂及其配置方法 | 第36-38页 |
| 3.2.7.2 蛋白提取步骤 | 第38页 |
| 3.2.7.2 BCA蛋白浓度测定 | 第38页 |
| 3.2.7.3 免疫印迹具体步骤 | 第38-40页 |
| 3.3 统计学分析 | 第40-41页 |
| 第四章 实验结果 | 第41-50页 |
| 4.1 EGCG能够抑制甲状腺乳头状癌细胞TPC-1 的生长 | 第41-42页 |
| 4.2 EGCG促进甲状腺乳头状癌细胞TPC-1的凋亡 | 第42-45页 |
| 4.3 EGCG 诱导甲状腺乳头状癌细胞TPC-1周期阻滞在S期 | 第45-46页 |
| 4.4 EGCG促进甲状腺乳头状癌细胞自噬水平的上调 | 第46-50页 |
| 4.4.1 EGCG明显促进甲状腺乳头状癌细胞TPC-1 自噬相关蛋白的活化 | 第46页 |
| 4.4.2 AKT/mTOR信号途径参与EGCG诱导的甲状腺乳头状癌细胞TPC-1 自噬水平的上调 | 第46-47页 |
| 4.4.3 EGCG联合自噬抑制剂能够进一步抑制甲状腺乳头状癌细胞TPC-1 的生长 | 第47-50页 |
| 第五章 讨论 | 第50-52页 |
| 第六章 主要结论与展望 | 第52-53页 |
| 6.1 主要结论 | 第52页 |
| 6.2 展望 | 第52-53页 |
| 参考文献 | 第53-65页 |
| 在学期间发表的学术论文 | 第65-66页 |
| 致谢 | 第66-67页 |
