| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 第一章 绪论 | 第17-33页 |
| 1.1 红枣的概况 | 第17-20页 |
| 1.1.1 红枣的营养成分 | 第17页 |
| 1.1.2 红枣的药用价值 | 第17-18页 |
| 1.1.3 红枣的开发利用 | 第18-20页 |
| 1.2 红枣多糖的研究现状 | 第20-30页 |
| 1.2.1 红枣多糖的提取 | 第20-25页 |
| 1.2.2 红枣多糖的分离纯化 | 第25-26页 |
| 1.2.3 红枣多糖的生物活性 | 第26-28页 |
| 1.2.4 红枣多糖的结构研究 | 第28-29页 |
| 1.2.5 红枣多糖的改性 | 第29页 |
| 1.2.6 红枣多糖的干燥 | 第29-30页 |
| 1.3 立题背景与意义 | 第30页 |
| 1.4 本研究的主要内容 | 第30-31页 |
| 1.5 本研究的创新点及工艺路线 | 第31-32页 |
| 1.5.1 研究的创新点 | 第31-32页 |
| 1.5.2 研究的工艺路线 | 第32页 |
| 1.6 项目来源与经费支持 | 第32-33页 |
| 第二章 减压内部沸腾法提取壶瓶枣多糖 | 第33-53页 |
| 2.1 引言 | 第33页 |
| 2.2 实验材料与仪器 | 第33-35页 |
| 2.2.1 实验原料 | 第33页 |
| 2.2.2 试剂 | 第33-34页 |
| 2.2.3 仪器与设备 | 第34-35页 |
| 2.3 实验方法 | 第35-40页 |
| 2.3.1 壶瓶枣干燥预处理 | 第35-36页 |
| 2.3.2 含水量及色差的测量方法 | 第36页 |
| 2.3.3 壶瓶枣中水溶性成分的提取 | 第36页 |
| 2.3.4 水溶性成分含量的测定 | 第36-39页 |
| 2.3.5 单因素及正交实验 | 第39-40页 |
| 2.4 结果与分析 | 第40-51页 |
| 2.4.1 不同干燥方式对枣粉含水量的影响 | 第40-41页 |
| 2.4.2 不同干燥方式对枣粉色差的影响 | 第41-42页 |
| 2.4.3 不同干燥方式对枣粉水溶性成分的影响 | 第42-43页 |
| 2.4.4 不同干燥方式枣粉的粒度与微观形态分析 | 第43-44页 |
| 2.4.5 单因素实验结果 | 第44-49页 |
| 2.4.6 提取工艺的正交实验优化结果 | 第49-51页 |
| 2.4.7 两种提取方法的比较 | 第51页 |
| 2.5 本章小结 | 第51-53页 |
| 第三章 壶瓶枣多糖的脱色及脱蛋白工艺研究 | 第53-70页 |
| 3.1 引言 | 第53-54页 |
| 3.2 实验材料与仪器 | 第54-55页 |
| 3.2.1 实验原料 | 第54页 |
| 3.2.2 试剂 | 第54-55页 |
| 3.2.3 仪器与设备 | 第55页 |
| 3.3 实验方法 | 第55-58页 |
| 3.3.1 壶瓶枣多糖溶液脱色率的测量方法 | 第55-56页 |
| 3.3.2 壶瓶枣多糖溶液脱蛋白率的测量方法 | 第56页 |
| 3.3.3 壶瓶枣多糖溶液多糖保留率的测量方法 | 第56-57页 |
| 3.3.4 壶瓶枣多糖溶液的脱色方法 | 第57-58页 |
| 3.3.5 壶瓶枣多糖溶液的脱蛋白方法 | 第58页 |
| 3.4 结果与分析 | 第58-69页 |
| 3.4.1 脱色材料的筛选结果 | 第58-60页 |
| 3.4.2 D900型大孔吸附树脂脱色脱蛋白的单因素实验结果 | 第60-62页 |
| 3.4.3 D900型大孔吸附树脂脱色脱蛋白工艺的正交实验优化结果 | 第62-66页 |
| 3.4.4 脱蛋白材料的筛选结果 | 第66页 |
| 3.4.5 Na Cl脱蛋白的单因素实验结果 | 第66-69页 |
| 3.5 本章小结 | 第69-70页 |
| 第四章 壶瓶枣多糖的纯化、结构及抗氧化活性研究 | 第70-90页 |
| 4.1 引言 | 第70页 |
| 4.2 实验材料与仪器 | 第70-72页 |
| 4.2.1 实验原料 | 第70页 |
| 4.2.2 试剂 | 第70-71页 |
| 4.2.3 仪器与设备 | 第71-72页 |
| 4.3 实验方法 | 第72-76页 |
| 4.3.1 多糖浓度的测量方法 | 第72页 |
| 4.3.2 蛋白质浓度的测量方法 | 第72-73页 |
| 4.3.3 抗氧化活性的分析方法 | 第73-74页 |
| 4.3.4 壶瓶枣多糖的分级纯化 | 第74-75页 |
| 4.3.5 壶瓶枣多糖纯度及分子量测定 | 第75页 |
| 4.3.6 红外光谱分析方法 | 第75页 |
| 4.3.7 单糖组成分析方法 | 第75-76页 |
| 4.4 结果与分析 | 第76-89页 |
| 4.4.1 壶瓶枣多糖的D900型大孔吸附树脂柱分离纯化 | 第76-77页 |
| 4.4.2 壶瓶枣多糖的DEAE-纤维素-52层析柱分级纯化 | 第77-79页 |
| 4.4.3 DEAE-纤维素-52层析柱纯化后多糖的抗氧化活性 | 第79-81页 |
| 4.4.4 壶瓶枣多糖的Sepharose Cl-6B凝胶柱分级纯化 | 第81-82页 |
| 4.4.5 ZJP-2b和ZJP-5a的抗氧化活性 | 第82-85页 |
| 4.4.6 ZJP-2b和ZJP-5a的纯度及分子量鉴定 | 第85-86页 |
| 4.4.7 红外光谱分析结果 | 第86-87页 |
| 4.4.8 单糖组成分析结果 | 第87-89页 |
| 4.5 本章小结 | 第89-90页 |
| 第五章 超声波雾化干燥壶瓶枣多糖的研究 | 第90-103页 |
| 5.1 引言 | 第90页 |
| 5.2 实验材料与仪器 | 第90-91页 |
| 5.2.1 实验原料 | 第90页 |
| 5.2.2 试剂 | 第90-91页 |
| 5.2.3 仪器与设备 | 第91页 |
| 5.3 实验方法 | 第91-95页 |
| 5.3.1 超声波雾化干燥 | 第91-93页 |
| 5.3.2 二流体雾化干燥 | 第93页 |
| 5.3.3 真空冷冻干燥 | 第93-94页 |
| 5.3.4 含水量的测量方法 | 第94页 |
| 5.3.5 红外光谱分析方法 | 第94页 |
| 5.3.6 羟基自由基清除能力的测量方法 | 第94页 |
| 5.3.7 单糖组成分析方法 | 第94-95页 |
| 5.4 结果与分析 | 第95-102页 |
| 5.4.1 超声波雾化干燥工艺的优化 | 第95-97页 |
| 5.4.2 验证实验 | 第97-98页 |
| 5.4.3 不同干燥方法的比较 | 第98-102页 |
| 5.5 本章小结 | 第102-103页 |
| 第六章 结论与展望 | 第103-106页 |
| 6.1 结论 | 第103-104页 |
| 6.2 展望 | 第104-106页 |
| 参考文献 | 第106-119页 |
| 在读期间的学术研究 | 第119-120页 |
| 致谢 | 第120页 |
