| 致谢 | 第5-6页 |
| 第一部分 摘要 | 第6-8页 |
| 第一部分 英文摘要 | 第8-10页 |
| 第二部分 摘要 | 第10-11页 |
| 第二部分 英文摘要 | 第11-13页 |
| 简写(List of abbreviation) | 第13-14页 |
| 目次 | 第14-18页 |
| 秀丽隐杆线虫气味感受与识别的生物物理特性与分子机制的研究 | 第18-70页 |
| 1. 引言 | 第18-21页 |
| 2. 实验材料和方法 | 第21-28页 |
| 2.1 线虫培养条件与品系信息 | 第21-22页 |
| 2.2 线虫解剖和在体电生理记录 | 第22-23页 |
| 2.3 嗅觉行为学实验 | 第23-24页 |
| 2.4 溶液的配制 | 第24-26页 |
| 2.5 主要药品来源 | 第26-27页 |
| 2.6 主要实验仪器及软件 | 第27页 |
| 2.7 数据统计与分析 | 第27-28页 |
| 3. 实验结果 | 第28-59页 |
| 3.1 AWC神经元在给予气味时被超极化而在洗脱气味时被去极化 | 第28-30页 |
| 3.2 AWC神经元的嗅觉反应依赖于CNG离子通道TAX-2/TAX-4,并且TAX-2/TAX-4在静息时处于开放状态 | 第30-34页 |
| 3.3 AWC神经元的嗅觉反应存在适应现象 | 第34-35页 |
| 3.4 AWC神经元的嗅觉反应依赖于Gα ODR-3,GPA-3和膜受体型鸟苷酸环化酶ODR-1和DAF-11 | 第35-38页 |
| 3.5 磷酸二酯酶PDE-1,2,3,5不是AWC神经元嗅觉反应的主要效应分子 | 第38-40页 |
| 3.6 AWB神经元对高低浓度的异戊醇有不同的嗅觉反应 | 第40-41页 |
| 3.7 AWB神经元的嗅觉反应依赖于CNG离子通道TAX-2/TAX-4,并且TAX-2/TAX-4在静息时处于开放状态 | 第41-43页 |
| 3.8 AWB神经元的嗅觉反应依赖于膜受体型的鸟苷酸环化酶ODR-1 | 第43-44页 |
| 3.9 AWB神经元对高低浓度IAA的反应依赖于不同的G α | 第44-47页 |
| 3.10 AWB神经元可能通过抑制GC感受高浓度IAA,通过抑制PDE-1,2,3,5 感受低浓度IAA | 第47-52页 |
| 3.11 ASH神经元只感受高浓度的IAA | 第52-54页 |
| 3.12 AWA神经元既可感受高浓度IAA也可感受低浓度IAA | 第54-55页 |
| 3.13 ADL神经元不参与对IAA的感受 | 第55-59页 |
| 4. 讨论 | 第59-64页 |
| 4.1 AWC的胞内通路与视杆视锥细胞光反应的相似性 | 第59-60页 |
| 4.2 AWB神经元对高低浓度气味的不同嗅觉通路 | 第60-62页 |
| 4.3 线虫可以利用不同嗅觉神经元的组合对气味浓度进行编码 | 第62-64页 |
| 5. 参考文献 | 第64-70页 |
| 文献综述 环核苷酸门控的离子通道(CNG channel)介导的感觉信号传递 | 第70-117页 |
| 摘要 | 第70-71页 |
| 前言 | 第71-74页 |
| 1. 感觉信号传递中涉及到的的各关键分子 | 第74-84页 |
| 1.1 GC和cGMP | 第74-75页 |
| 1.2 AC和cAMP | 第75-77页 |
| 1.3 PDE | 第77-79页 |
| 1.4 CNG通道 | 第79-81页 |
| 1.5 G 蛋白偶联受体激酶（G protein-coupled receptorkinases,GRKs),鸟苷酸环化酶激活蛋白（guanylate cyclase activatingprotein, GCAP) | 第81-84页 |
| 2. cGMP门控的CNG通道参与的感觉传递 | 第84-93页 |
| 2.1 超极化型感受器电位 | 第84-90页 |
| 2.2 去极化型感受器电位 | 第90-93页 |
| 3. cAMP门控的CNG通道参与的脊椎动物嗅觉的感受 | 第93-95页 |
| 4. 结语 | 第95-97页 |
| 5. 参考文献 | 第97-117页 |
| 抑制溶酶体释放对胶质瘤细胞迁移的抑制效应的研究 | 第117-146页 |
| 1. 引言 | 第117-120页 |
| 2. 实验材料和方法 | 第120-127页 |
| 2.1 细胞培养 | 第120页 |
| 2.2 脂质体转染及siRNA转染 | 第120页 |
| 2.3 细胞划痕实验(scratch assay) | 第120-121页 |
| 2.4 Transwell assay | 第121页 |
| 2.5 cathepsin D的检测 | 第121页 |
| 2.6 RT-PCR | 第121-122页 |
| 2.7 Western Blot | 第122页 |
| 2.8 免疫组织化学染色 | 第122-123页 |
| 2.9 流式细胞分析(FACS) | 第123页 |
| 2.10 主要溶液的配制 | 第123-125页 |
| 2.11 主要药品来源 | 第125页 |
| 2.12 主要实验仪器及软件 | 第125-126页 |
| 2.13 数据统计与分析 | 第126-127页 |
| 3. 实验结果 | 第127-141页 |
| 3.1 GPN和vacuolin-1抑制胶质瘤细胞的浸润和迁移 | 第127-129页 |
| 3.2 RNAi下调Rab27a的表达抑制胶质瘤细胞的浸润和迁移 | 第129-133页 |
| 3.3 RNAi下调Rab27a的表达抑制胶质瘤细胞Cathepsin D的释放 | 第133-134页 |
| 3.4 抑制Cathepsin D的酶活性抑制胶质瘤细胞的迁移 | 第134-135页 |
| 3.5 胶质瘤细胞的Cathepsin D,Rab27a以及溶酶体有显著的共定位 | 第135-138页 |
| 3.6 胶质瘤细胞的溶酶体比原代培养的星型胶质细胞更易于释放 | 第138-141页 |
| 4. 讨论 | 第141-143页 |
| 5. 参考文献 | 第143-146页 |
| 作者简介及在读期间所取得的科研成果 | 第146页 |
