| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5页 |
| 第一章 文献综述 | 第10-20页 |
| 1.1 母猪子宫内膜炎简介 | 第10-13页 |
| 1.1.1 子宫内膜炎发病机理 | 第10页 |
| 1.1.2 母猪子宫内膜炎的分类及症状 | 第10-11页 |
| 1.1.3 母猪子宫内膜炎流行病学 | 第11页 |
| 1.1.4 引起母猪子宫内膜炎的发病因素 | 第11-13页 |
| 1.1.5 母猪子宫内膜炎的危害 | 第13页 |
| 1.2 细胞因子简介 | 第13-16页 |
| 1.2.1 各炎症细胞因子 | 第13-14页 |
| 1.2.2 细胞因子检测方法 | 第14-15页 |
| 1.2.3 细菌感染的炎症与炎症细胞因子关系 | 第15-16页 |
| 1.3 子宫内膜炎动物模型的构建 | 第16页 |
| 1.3.1 动物模型构建方法 | 第16页 |
| 1.3.2 子宫内膜炎动物模型的评价 | 第16页 |
| 1.4 抗体蛋白芯片 | 第16-17页 |
| 1.4.1 抗体蛋白芯片原理 | 第16-17页 |
| 1.4.2 抗体蛋白芯片在检测子宫内膜炎相关炎症细胞因子中的优势 | 第17页 |
| 1.5 研究的目的与意义 | 第17-18页 |
| 1.6 研究的主要内容 | 第18页 |
| 1.7 研究技术路线 | 第18-20页 |
| 第二章 猪源大肠埃希菌和葡萄球菌的分离与鉴定 | 第20-28页 |
| 2.1 材料与方法 | 第20-23页 |
| 2.1.1 材料 | 第20-22页 |
| 2.1.2 方法 | 第22-23页 |
| 2.2 结果与分析 | 第23-27页 |
| 2.2.1 镜检结果 | 第23-24页 |
| 2.2.2 电泳结果 | 第24页 |
| 2.2.3 测序结果 | 第24-26页 |
| 2.2.4 测序结果分析 | 第26-27页 |
| 2.3 讨论 | 第27-28页 |
| 第三章 SD大鼠子宫内膜炎模型构建及病理学观察 | 第28-38页 |
| 3.1 材料与方法 | 第28-32页 |
| 3.1.1 材料 | 第28-29页 |
| 3.1.2 方法 | 第29-32页 |
| 3.3 结果与分析 | 第32-35页 |
| 3.3.1 手术前后大鼠身体状态比较 | 第32页 |
| 3.3.2 阴道细胞涂片上皮细胞变化及外阴部特点观察 | 第32页 |
| 3.3.3 SD大鼠子宫内膜炎病理剖检观察 | 第32-34页 |
| 3.3.4 SD子宫指数统计结果 | 第34页 |
| 3.3.5 SD大鼠左右子宫子宫内膜炎的病理组织切片观察结果 | 第34-35页 |
| 3.4 讨论 | 第35-38页 |
| 3.4.1 SD大鼠手术麻醉药的选择及发情间期判定的意义 | 第35-36页 |
| 3.4.2 大鼠子宫内膜炎模型复制及意义 | 第36页 |
| 3.4.3 猪源病原菌诱导产后SD大鼠子宫内膜炎模型的构建 | 第36-38页 |
| 第四章 SD大鼠子宫内膜炎炎症细胞因子抗体芯片析 | 第38-48页 |
| 4.1 材料与方法 | 第38-39页 |
| 4.1.1 材料 | 第38-39页 |
| 4.1.2 试验仪器与试剂 | 第39页 |
| 4.2 试验方法 | 第39-43页 |
| 4.2.1 蛋白抗体技术对子宫组织炎症因子表达的检测 | 第39-40页 |
| 4.2.2 样品蛋白浓度测定与稀释方案 | 第40页 |
| 4.2.3 玻片芯片的完全干燥 | 第40页 |
| 4.2.4 标准品的配置 | 第40-41页 |
| 4.2.5 芯片操作流程 | 第41-43页 |
| 4.3 结果与分析 | 第43-44页 |
| 4.3.1 数据检测结果与分析 | 第43-44页 |
| 4.4 讨论 | 第44-48页 |
| 4.4.1 检测模型子宫组织相关炎性细胞因子评价的意义 | 第44页 |
| 4.4.2 子宫内膜炎相关炎性细胞因子变化分析 | 第44-48页 |
| 第五章 总结与展望 | 第48-51页 |
| 5.1 研究总结 | 第48-49页 |
| 5.1.1 研究的主要成果 | 第48-49页 |
| 5.1.2 创新点 | 第49页 |
| 5.2 展望 | 第49-51页 |
| 参考文献 | 第51-56页 |
| 附录 | 第56-58页 |
| 致谢 | 第58-61页 |
| 作者简介 | 第61页 |
