| 中文摘要 | 第11-15页 |
| Abstract | 第15-18页 |
| 缩略语说明 | 第19-22页 |
| 第一章 前言 | 第22-41页 |
| 1 AD研究现状 | 第22-24页 |
| 2 AD发病机制的研究 | 第24-29页 |
| 3 AD模型的制备 | 第29-32页 |
| 4 AD的治疗 | 第32-35页 |
| 5 糖类及其衍生物抗AD研究概况 | 第35-39页 |
| 6 本课题拟解决的问题和意义 | 第39-41页 |
| 第二章 LMWCS对Aβ诱导的神经细胞损伤的保护作用及机制探讨 | 第41-71页 |
| 1 实验材料 | 第41-45页 |
| 1.1 药品及试剂 | 第41-42页 |
| 1.2 仪器及耗材 | 第42-44页 |
| 1.3 工作溶液的配制 | 第44-45页 |
| 1.4 细胞 | 第45页 |
| 2 实验方法 | 第45-52页 |
| 2.1 LMWCS的制备及分析 | 第45-46页 |
| 2.2 细胞活力测定 | 第46-47页 |
| 2.3 细胞凋亡测定 | 第47页 |
| 2.4 游离钙离子浓度测定 | 第47页 |
| 2.5 ROS测定 | 第47-48页 |
| 2.6 细胞内氧化应激及能量代谢水平测定 | 第48-49页 |
| 2.7 MMP测定 | 第49页 |
| 2.8 Caspase-3酶测定 | 第49-50页 |
| 2.9 总蛋白的提取及定量 | 第50-51页 |
| 2.10 Western blot分析 | 第51页 |
| 2.11 统计学处理 | 第51-52页 |
| 3 实验结果 | 第52-67页 |
| 3.1 LMWCS的制备 | 第52-54页 |
| 3.2 LMWCS对Aβ25-35诱导的神经细胞损伤的保护作用 | 第54-57页 |
| 3.3 LMWCS对Aβ25-35引起细胞凋亡的影响 | 第57页 |
| 3.4 LMWCS对Aβ25-35引起细胞内游离钙离子浓度变化的影响 | 第57-59页 |
| 3.5 LMWCS对Aβ25-35引起细胞内ROS变化的影响 | 第59-60页 |
| 3.6 LMWCS对Aβ25-35引起细胞内氧化应激水平变化的影响 | 第60-63页 |
| 3.7 LMWCS对Aβ25-35引起的MMP变化的影响 | 第63页 |
| 3.8 LMWCS对Aβ25-35诱导细胞表达Caspase-3变化的影响 | 第63-65页 |
| 3.9 LMWCS对Aβ25-35诱导细胞凋亡相关蛋白表达量变化的影响 | 第65-67页 |
| 4 讨论 | 第67-70页 |
| 5 小结 | 第70-71页 |
| 第三章 LMWCS对Aβ诱导小鼠脑损伤的保护作用及机制的研究 | 第71-97页 |
| 1 实验材料 | 第71-72页 |
| 1.1 药品及试剂 | 第71页 |
| 1.2 仪器 | 第71页 |
| 1.3 工作溶液的配制 | 第71-72页 |
| 1.4 动物来源 | 第72页 |
| 2 实验方法 | 第72-79页 |
| 2.1 动物分组和给药方法 | 第72-73页 |
| 2.2 模型制作 | 第73页 |
| 2.3 行为学检测 | 第73-74页 |
| 2.4 小鼠大脑海马和皮层区氧化应激及能量代谢水平的测定 | 第74页 |
| 2.5 小鼠大脑海马和皮层区胆碱能功能测定 | 第74-75页 |
| 2.6 免疫组织化学 | 第75-78页 |
| 2.7 总蛋白的提取及定量 | 第78页 |
| 2.8 Western blot分析 | 第78页 |
| 2.9 实验结果统计 | 第78-79页 |
| 3 实验结果 | 第79-91页 |
| 3.1 LMWCS对Aβ模型小鼠学习记忆能力变化的影响 | 第79-82页 |
| 3.2 LMWCS对Aβ模型小鼠脑组织氧化应激水平变化的影响 | 第82-86页 |
| 3.3 LMWCS对Aβ模型小鼠大脑中胆碱酯酶活性变化的影响 | 第86-87页 |
| 3.4 免疫组化结果 | 第87-90页 |
| 3.5 Western blot结果 | 第90-91页 |
| 4 讨论 | 第91-96页 |
| 5 小结 | 第96-97页 |
| 总结与展望 | 第97-99页 |
| 1 论文主要结论 | 第97-98页 |
| 2 论文创新点 | 第98页 |
| 3 论文的不足之处 | 第98页 |
| 4 展望 | 第98-99页 |
| 参考文献 | 第99-114页 |
| 致谢 | 第114-115页 |
| 博士期间发表的论文 | 第115-116页 |
| 论文 | 第116-130页 |
| 附件 | 第130页 |
