摘要 | 第4-6页 |
abstract | 第6-7页 |
英文缩略表 | 第10-11页 |
引言 | 第11-13页 |
第1章 实验研究 | 第13-46页 |
1.1 实验仪器及试剂 | 第13-16页 |
1.1.1 主要实验仪器 | 第13页 |
1.1.2 实验试剂 | 第13-15页 |
1.1.3 试剂配制 | 第15-16页 |
1.1.4 主要实验耗材 | 第16页 |
1.2 实验细胞 | 第16-18页 |
1.2.1 原代海马神经元体外培养 | 第16-17页 |
1.2.2 体外培养的海马神经元纯度鉴定 | 第17-18页 |
1.2.3 细胞染毒及分组 | 第18页 |
1.3 研究内容及方法 | 第18-25页 |
1.3.1 细胞形态的观察 | 第18-19页 |
1.3.2 CCK8检测细胞活力 | 第19页 |
1.3.3 流式细胞仪测定细胞内Ca2+浓度 | 第19-20页 |
1.3.4 试剂盒检测细胞培养上清液中NOS活力和NO含量 | 第20页 |
1.3.5 RT-PCR法检测SYN、GAP-43、PSD-95 mRNA的表达 | 第20-21页 |
1.3.6 Western blot法检测SYN、GAP-43、PSD-95 蛋白的表达 | 第21-24页 |
1.3.7 统计学分析 | 第24-25页 |
1.4 结果 | 第25-39页 |
1.4.1 体外培养海马神经元的纯度鉴定 | 第25页 |
1.4.2 原代培养的海马神经元形态学观察 | 第25-26页 |
1.4.3 氟处理对海马神经元生存率的影响 | 第26-27页 |
1.4.4 氟处理对海马神经元形态的影响 | 第27-29页 |
1.4.5 氟处理对海马神经元中Ca2+及pCaMKⅡ蛋白表达水平的影响 | 第29-31页 |
1.4.6 氟处理对海马神经元中TNOS活力和NO含量的影响 | 第31-33页 |
1.4.7 氟处理对SYN、GAP-43、PSD-95 mRNA表达水平的影响 | 第33-35页 |
1.4.8 氟处理对SYN、GAP-43、PSD-95 蛋白表达水平的影响 | 第35-39页 |
1.5 讨论 | 第39-41页 |
1.6 结论 | 第41-42页 |
参考文献 | 第42-46页 |
第2章 综述 神经突触可塑性调节机制 | 第46-55页 |
2.1 Hebbian突触可塑性 | 第47-48页 |
2.2 Homeostatic突触可塑性 | 第48-50页 |
参考文献 | 第50-55页 |
结论 | 第55-56页 |
致谢 | 第56-57页 |
导师简介 | 第57-58页 |
作者简介 | 第58-59页 |
学位论文数据集 | 第59页 |