| 摘要 | 第3-4页 |
| ABSTRACT | 第4-5页 |
| 第1章 引言 | 第9-11页 |
| 第2章 材料与方法 | 第11-21页 |
| 2.1 实验材料 | 第11-12页 |
| 2.1.1 细胞株 | 第11页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第11-12页 |
| 2.1.3 主要仪器与设备 | 第12页 |
| 2.2 主要实验器材、试剂和溶液的准备 | 第12-15页 |
| 2.2.1 细胞培养器皿的处理 | 第12页 |
| 2.2.2 去RNA酶处理 | 第12页 |
| 2.2.3 PBS配制 | 第12-13页 |
| 2.2.4 0.25%胰酶（2000ml）配制 | 第13页 |
| 2.2.5 RPMI 1640 培养基的配制 | 第13页 |
| 2.2.6 JQ1溶液的配制 | 第13页 |
| 2.2.7 MTT相关溶液的配制 | 第13页 |
| 2.2.8 琼脂糖凝胶的配制 | 第13-14页 |
| 2.2.9 Western Blot相关试剂配置 | 第14-15页 |
| 2.3 实验方法 | 第15-21页 |
| 2.3.1 HeLa细胞的培养、传代、冻存和复苏 | 第15页 |
| 2.3.2 MTT比色法检测JQ1对HeLa细胞增殖的影响 | 第15-16页 |
| 2.3.3 JQ1对HeLa细胞克隆形成实验的影响 | 第16页 |
| 2.3.4 HeLa细胞c-Myc mRNA检测 | 第16-17页 |
| 2.3.5 SYBR Green I实时荧光定量PCR检测c-Myc mRNA的表达 | 第17-19页 |
| 2.3.6 Western blot检测c-Myc蛋白的表达 | 第19-20页 |
| 2.3.7 统计学处理 | 第20-21页 |
| 第3章 结果 | 第21-26页 |
| 3.1 MTT比色法检测JQ1对HELA细胞增殖的影响 | 第21页 |
| 3.2 JQ1对HELA细胞克隆形成实验的影响 | 第21-22页 |
| 3.3 细胞总RNA质量和浓度测定 | 第22-23页 |
| 3.4 PCR扩增的特异性 | 第23-24页 |
| 3.5 C-MYC MRNA的相对表达量 | 第24页 |
| 3.6 C-MYC蛋白表达变化 | 第24-26页 |
| 第4章 讨论 | 第26-29页 |
| 第5章 结论与展望 | 第29-30页 |
| 5.1 结论 | 第29页 |
| 5.2 进一步工作的方向 | 第29-30页 |
| 致谢 | 第30-31页 |
| 参考文献 | 第31-33页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第33-34页 |
| 综述 | 第34-40页 |
| 参考文献 | 第37-40页 |
