| 摘要 | 第9-12页 |
| ABSTRACT | 第12-15页 |
| 符号及缩略语 | 第16-17页 |
| 第一章 文献综述 | 第17-39页 |
| 1 多糖的研究进展 | 第17-24页 |
| 1.1 多糖的提取方法 | 第17-18页 |
| 1.2 多糖的分离纯化 | 第18-20页 |
| 1.3 多糖的纯度鉴定 | 第20页 |
| 1.4 多糖的生物活性 | 第20-24页 |
| 2 白术及白术多糖 | 第24-28页 |
| 2.1 白术的概况 | 第24-25页 |
| 2.2 白术多糖 | 第25-26页 |
| 2.3 白术多糖的生物活性 | 第26-28页 |
| 3 硫酸化多糖的研究进展 | 第28-31页 |
| 3.1 硫酸化多糖的来源 | 第28-29页 |
| 3.2 硫酸化多糖的生物活性 | 第29-31页 |
| 4 本课题的目的意义 | 第31-32页 |
| 参考文献 | 第32-39页 |
| 第二章 白术多糖的提取 | 第39-45页 |
| 摘要 | 第39页 |
| 1 材料与方法 | 第39-42页 |
| 1.1 试验药物 | 第39页 |
| 1.2 主要试剂 | 第39-40页 |
| 1.3 主要仪器 | 第40页 |
| 1.4 白术多糖的提取 | 第40页 |
| 1.5 多糖含量的测定 | 第40-41页 |
| 1.6 蛋白含量的测定 | 第41-42页 |
| 2 结果与分析 | 第42页 |
| 2.1 各白术多糖的提取率、糖含量和蛋白含量 | 第42页 |
| 3 讨论 | 第42-43页 |
| 3.1 白术多糖的提取 | 第42-43页 |
| 3.2 多糖含量的测定 | 第43页 |
| 3.3 蛋白含量的测定 | 第43页 |
| 参考文献 | 第43-45页 |
| 第三章 白术多糖抗病毒活性比较 | 第45-57页 |
| 摘要 | 第45-46页 |
| 1 材料与方法 | 第46-48页 |
| 1.1 多糖的准备 | 第46页 |
| 1.2 主要试剂及配制 | 第46-47页 |
| 1.3 主要仪器 | 第47页 |
| 1.4 病毒准备 | 第47页 |
| 1.5 白术多糖对CEF细胞安全浓度的测定 | 第47-48页 |
| 1.6 多糖抗NDV感染细胞能力的测定 | 第48页 |
| 1.7 数据分析 | 第48页 |
| 2 结果与分析 | 第48-53页 |
| 2.1 多糖对CEF生长的影响和最大安全浓度 | 第48-49页 |
| 2.2 先加多糖时NDV感染CEF能力的变化 | 第49-51页 |
| 2.3 后加多糖时NDV感染CEF能力的变化 | 第51-52页 |
| 2.4 多糖和病毒感作后加时NDV感染细胞能力的变化 | 第52-53页 |
| 3 讨论 | 第53-54页 |
| 3.1 先加多糖时多糖对NDV感染CEF能力的影响 | 第53页 |
| 3.2 后加多糖时多糖对NDV感染CEF能力的影响 | 第53页 |
| 3.3 多糖与病毒感作后加时多糖对NDV感染CEF能力的影响 | 第53-54页 |
| 3.4 测定多糖对细胞安全浓度的必要性 | 第54页 |
| 参考文献 | 第54-57页 |
| 第四章 白术多糖增强免疫活性的比较 | 第57-65页 |
| 摘要 | 第57页 |
| 1 材料与方法 | 第57-59页 |
| 1.1 试验药物 | 第57-58页 |
| 1.2 主要试剂 | 第58页 |
| 1.3 主要仪器 | 第58页 |
| 1.4 试验方法 | 第58-59页 |
| 1.5 数据分析 | 第59页 |
| 2 结果与分析 | 第59-63页 |
| 2.1 多糖对鸡外周血淋巴细胞的最大安全浓度 | 第59-60页 |
| 2.2 多糖单独作用时淋巴细胞增殖的变化 | 第60-61页 |
| 2.3 多糖与PHA共同作用时淋巴细胞增殖的变化 | 第61-63页 |
| 3 讨论 | 第63-64页 |
| 3.1 白术多糖单独作用时对淋巴细胞增殖的影响 | 第63页 |
| 3.2 白术多糖与PHA共同作用时对淋巴细胞增殖的影响 | 第63页 |
| 3.3 关于MTT法测定淋巴细胞增殖 | 第63-64页 |
| 参考文献 | 第64-65页 |
| 第五章 白术多糖硫酸化修饰条件的优选 | 第65-75页 |
| 摘要 | 第65页 |
| 1 材料与方法 | 第65-66页 |
| 1.1 主要材料 | 第65页 |
| 1.2 试剂 | 第65-66页 |
| 1.3 主要仪器 | 第66页 |
| 2 多糖的纯化 | 第66页 |
| 2.1 去处蛋白 | 第66页 |
| 2.2 纤维柱DEAE-52层析 | 第66页 |
| 3 正交试验 | 第66-68页 |
| 3.1 因素水平确定 | 第66-67页 |
| 3.2 试剂制备 | 第67页 |
| 3.3 酯化操作 | 第67页 |
| 3.4 硫酸基取代度测定 | 第67-68页 |
| 4 结果 | 第68-72页 |
| 4.1 多糖的纯化 | 第68-69页 |
| 4.2 正交试验结果 | 第69-72页 |
| 5 讨论 | 第72-73页 |
| 5.1 多糖的纯化 | 第72页 |
| 5.2 多糖硫酸化条件的筛选 | 第72-73页 |
| 参考文献 | 第73-75页 |
| 第六章 硫酸化白术多糖抗病毒活性的比较 | 第75-85页 |
| 摘要 | 第75-76页 |
| 1 材料与方法 | 第76-77页 |
| 1.1 多糖的准备 | 第76页 |
| 1.2 病毒的准备 | 第76页 |
| 1.3 主要试剂及仪器 | 第76页 |
| 1.4 白术多糖及其硫酸化白术多糖对CEF的生长及安全浓度的测定 | 第76页 |
| 1.5 多糖抗NDV感染细胞能力的测定 | 第76-77页 |
| 1.6 数据分析 | 第77页 |
| 2 结果与分析 | 第77-82页 |
| 2.1 白术多糖及其硫酸化白术多糖对CEF的生长及其最大安全浓度 | 第77-78页 |
| 2.2 先加多糖时NDV感染CEF能力的变化 | 第78-79页 |
| 2.3 后加多糖时NDV感染CEF能力的变化 | 第79-81页 |
| 2.4 多糖和病毒感作后加时NDV感染CEF能力的变化 | 第81-82页 |
| 3 讨论 | 第82-83页 |
| 3.1 先加多糖时多糖抵抗NDV感染CEF能力的影响 | 第82页 |
| 3.2 后加多糖时多糖抵抗NDV感染CEF能力的影响 | 第82页 |
| 3.3 多糖和病毒感作加时多糖抵抗NDV感染CEF能力的影响 | 第82-83页 |
| 3.4 sAMP抗病毒活性与取代度的作用关系 | 第83页 |
| 参考文献 | 第83-85页 |
| 第七章 硫酸化白术多糖增强免疫活性比较 | 第85-91页 |
| 摘要 | 第85页 |
| 1 材料与方法 | 第85-86页 |
| 1.1 试验药物 | 第85页 |
| 1.2 主要试剂 | 第85-86页 |
| 1.3 主要仪器 | 第86页 |
| 1.4 试验方法 | 第86页 |
| 1.5 数据分析 | 第86页 |
| 2 结果 | 第86-89页 |
| 2.1 多糖单独作用时淋巴细胞增殖的变化 | 第86-88页 |
| 2.2 多糖与PHA共同作用时淋巴细胞增殖的变化 | 第88-89页 |
| 3 讨论 | 第89-90页 |
| 3.1 硫酸化多糖单独作用时对提高多糖淋巴细胞增殖率的影响 | 第89-90页 |
| 3.2 硫酸化多糖与PHA共同作用时对提高多糖淋巴细胞增殖率的影响 | 第90页 |
| 参考文献 | 第90-91页 |
| 全文结论 | 第91-93页 |
| 论文创新点 | 第93-95页 |
| 致谢 | 第95页 |
