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鰤诺卡氏菌毒力因子MCE1A的克隆、表达及免疫保护力的研究

摘要第4-6页
ABSTRACT第6-7页
第一章 引言第10-18页
    1 鰤诺卡氏菌概况第10-13页
        1.1 生物学特性第10-11页
        1.2 鰤诺卡氏菌的致病性第11页
        1.3 鰤诺卡氏菌的诊断检测技术进展第11-12页
        1.4 鰤诺卡氏菌病防治研究进展第12-13页
    2 鰤诺卡氏菌致病因子第13-14页
    3 致病性放线菌毒力因子的结构与功能第14-16页
        3.1 MCE蛋白家族概况第14-15页
        3.2 Ag85复合物第15页
        3.3 PE/PPE 家族蛋白第15-16页
        3.4 Cho D第16页
        3.5 磷脂酶C第16页
    4 研究目的及意义第16-18页
第二章 鰤诺卡氏菌侵染卵形鲳鲹后各组织菌载量动态变化第18-27页
    2.1 材料与方法第18-23页
        2.1.1 材料第18-19页
        2.1.2 方法第19-23页
    2.2 结果第23-25页
        2.2.1 标准曲线第23-24页
        2.2.2 鰤诺卡氏菌侵染卵形鲳鲹后鱼体各组织菌载量的动态变化第24页
        2.2.3 检测死亡高峰期鰤诺卡氏菌对卵形鲳鲹的组织嗜性第24-25页
    2.3 讨论第25-27页
第三章 鰤诺卡氏菌mce1A基因的克隆第27-47页
    3.1 材料与方法第27-32页
        3.1.1 材料第27-28页
        3.1.2 方法第28-32页
    3.2 结果第32-44页
        3.2.1 MCE蛋白家族验证实验第32-34页
        3.2.2 PCR扩增结果第34页
        3.2.3 mce1A基因全序列第34-36页
        3.2.4 信号肽分析结果第36-37页
        3.2.5 跨膜分析结果第37页
        3.2.6 mce1A氨基酸序列分析第37-40页
        3.2.7 mce1A氨基酸序列的同源性分析第40-41页
        3.2.8 构建系统进化树第41-44页
    3.3 讨论第44-47页
第四章 鰤诺卡氏菌mce1A基因原核表达第47-59页
    4.1 材料与方法第47-54页
        4.1.1 材料第47页
        4.1.2 方法第47-54页
    4.2 结果第54-58页
        4.2.1 PCR结果第54页
        4.2.2 质粒的双酶切第54-55页
        4.2.3 重组蛋白的诱导表达第55页
        4.2.4 重组蛋白原核表达条件的优化第55-56页
        4.2.5 重组蛋白的Western Blot检测第56-57页
        4.2.6 重组蛋白的可溶性检测第57页
        4.2.7 融合蛋白的纯化第57-58页
    4.3 讨论第58-59页
第五章 鰤诺卡氏菌MCE1A亚单位疫苗免疫保护力研究第59-63页
    5.1 材料与方法第59-60页
        5.1.1 材料第59页
        5.1.2 方法第59-60页
    5.2 结果第60-61页
        5.2.1 免疫接种成活率第60-61页
        5.2.2 MCE1A蛋白免疫 30d后的免疫保护效果第61页
    5.3 讨论第61-63页
第六章 鰤诺卡氏菌索状因子亚单位疫苗免疫保护力研究第63-67页
    6.1 材料与方法第63-64页
        6.1.1 材料第63页
        6.1.2 方法第63-64页
    6.2 结果第64-66页
        6.2.1 索状因子免疫接种成活率第64页
        6.2.2 索状因子免疫 15d后的免疫保护力第64-65页
        6.2.3 索状因子免疫 30d后的免疫保护力第65-66页
    6.3 讨论第66-67页
全文总结第67-68页
参考文献第68-75页
附录第75-76页
致谢第76页

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