| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 第一章 基于量子点的荧光免疫分析方法测定肿瘤标志物GP73 | 第9-35页 |
| 1 前言 | 第9-12页 |
| 2 试剂与仪器 | 第12-14页 |
| 2.1 试剂 | 第12-13页 |
| 2.2 仪器 | 第13-14页 |
| 3 实验部分 | 第14-19页 |
| 3.1 Mn-Cd Te/Cd S QDs的制备 | 第14页 |
| 3.2 实验中荧光光谱和荧光量子产率的测定 | 第14-15页 |
| 3.3 考察Mn-Cd Te/Cd S QDs在p H7.4 的磷酸缓冲溶液的稳定性 | 第15页 |
| 3.4 QDs-GP73抗体结合物的制备 | 第15页 |
| 3.5 琼脂糖凝胶电泳 | 第15-16页 |
| 3.6 QDs与GP73抗体结合条件的优化 | 第16-17页 |
| 3.7 QDs-GP73抗体-琼脂糖微珠荧光探针的制备 | 第17页 |
| 3.8 SDS-PAGE电泳 | 第17页 |
| 3.9 QDs-GP73抗体-琼脂糖微珠荧光探针检测条件优化 | 第17-18页 |
| 3.10 干扰实验 | 第18页 |
| 3.11 分析方法的验证 | 第18-19页 |
| 4 结果与讨论 | 第19-31页 |
| 4.1 实验原理 | 第19-20页 |
| 4.2 Cd Te、Cd Te/Cd S和Mn修饰的Cd Te/Cd S的光谱比较 | 第20-21页 |
| 4.3 量子点与抗体共价结合的验证 | 第21-22页 |
| 4.4 QDs与抗体结合条件的优化 | 第22-24页 |
| 4.5 QDs-GP73抗体与蛋白质A/G琼脂糖微珠结合的表征 | 第24-26页 |
| 4.6 QDs-抗体与琼脂糖微珠结合条件的优化 | 第26-28页 |
| 4.8 选择性实验 | 第28-29页 |
| 4.9 干扰实验 | 第29-30页 |
| 4.10 分析方法的验证 | 第30-31页 |
| 5 小结 | 第31-32页 |
| 参考文献 | 第32-35页 |
| 第二章 基于适配体结合的Cd Te QDs离子交换：一种新型的荧光信号放大体系用于腺苷的检测 | 第35-58页 |
| 1 前言 | 第35-37页 |
| 2 试剂与仪器 | 第37-39页 |
| 2.1 试剂 | 第37-38页 |
| 2.2 仪器 | 第38-39页 |
| 3 实验部分 | 第39-43页 |
| 3.1 Cd Te QDs的水相制备 | 第39页 |
| 3.2 Fe_3O_4磁性纳米粒子的制备 | 第39页 |
| 3.3 Fe_3O_4与腺苷适配体ABA1的结合 | 第39页 |
| 3.4 Cd Te QDs与腺苷适配体ABA2的结合 | 第39-40页 |
| 3.5 琼脂糖凝胶电泳 | 第40页 |
| 3.6 三明治结构反应条件的优化 | 第40-41页 |
| 3.7 考察缓冲溶液对体系的影响 | 第41-42页 |
| 3.8 考察Fe_3O_4磁性纳米粒子对于离子交换反应的影响 | 第42页 |
| 3.9 离子交换信号放大反应体系的条件优化 | 第42页 |
| 3.10 分析方法的验证 | 第42-43页 |
| 4 结果与讨论 | 第43-54页 |
| 4.1 实验机理 | 第43-45页 |
| 4.2 Cd Te QDs的光谱特征 | 第45页 |
| 4.3 羧基修饰Fe_3O_4的红外表征 | 第45-46页 |
| 4.4 Fe3O4与ABA1结合的表征 | 第46页 |
| 4.5 Cd Te QDs与ABA2结合的表征 | 第46-47页 |
| 4.6 考察三明治结构的最佳反应条件 | 第47-50页 |
| 4.7 考察缓冲溶液p H值对离子交换反应的影响 | 第50-51页 |
| 4.8 Fe3O4磁性纳米粒子对于离子交换反应的影响 | 第51-52页 |
| 4.9 考察离子交换信号放大体系的最佳反应条件 | 第52-53页 |
| 4.10 标准曲线 | 第53-54页 |
| 5 小结 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-58页 |
| 综述 | 第58-69页 |
| 参考文献 | 第65-69页 |
| 硕士期间发表文章 | 第69-70页 |
| 致谢 | 第70页 |
