中文摘要 | 第12-17页 |
ABSTRACT | 第17-22页 |
符号说明及缩写词 | 第23-25页 |
第一章 文献综述 | 第25-41页 |
1.1 内分泌干扰物质概述 | 第25-31页 |
1.1.1 内分泌干扰物的基本性质 | 第25-26页 |
1.1.2 内分泌干扰物的危害性 | 第26-29页 |
1.1.2.1 健康危害 | 第27-28页 |
1.1.2.2 生态危害 | 第28-29页 |
1.1.3 内分泌干扰物质的毒理学研究 | 第29-31页 |
1.2 西玛津的研究概况 | 第31-33页 |
1.2.1 西玛津的基本性质 | 第31-32页 |
1.2.2 西玛津的毒理学研究概况 | 第32-33页 |
1.3 分子毒理学的研究概况 | 第33-36页 |
1.3.1 分子毒理学研究的热点 | 第34-35页 |
1.3.2 分子生物标志物及其应用的研究 | 第35页 |
1.3.3 细胞与分子生物学新技术在毒理学的应用 | 第35页 |
1.3.4 分子毒理学的未来 | 第35-36页 |
1.4 两栖类在内分泌干扰物领域的研究背景 | 第36-40页 |
1.4.1 内分泌干扰物对两栖类生殖系统的影响 | 第36-38页 |
1.4.1.1 雌雄同体的产生 | 第37页 |
1.4.1.1 雌雄同体的产生 | 第37-38页 |
1.4.2 内分泌干扰物对两栖类变态的影响 | 第38-39页 |
1.4.3 内分泌干扰物对两栖类其他方面的影响 | 第39-40页 |
1.5 本课题开展思路及研究内容 | 第40-41页 |
第二章 西玛津对中华大蟾蜍发育的影响 | 第41-52页 |
2.1 引言 | 第41-42页 |
2.2 实验材料与仪器试剂 | 第42页 |
2.2.1 主要试剂 | 第42页 |
2.2.2 实验仪器 | 第42页 |
2.2.3 实验动物 | 第42页 |
2.3 实验方法 | 第42-44页 |
2.3.1 实验动物中华大蟾蜍的饲养和管理 | 第42页 |
2.3.2 暴露实验 | 第42-43页 |
2.3.3 一般生长指标观察 | 第43页 |
2.3.4 组织切片样本的制备 | 第43页 |
2.3.5 性腺组织切片的制备 | 第43页 |
2.3.6 生长发育的主要评价指标 | 第43-44页 |
2.3.7 统计方法 | 第44页 |
2.4 结果与分析 | 第44-50页 |
2.4.1 西玛津的实际检测浓度 | 第44-45页 |
2.4.2 中华大蟾蜍的死亡率 | 第45页 |
2.4.3 西玛津对中华大蟾蜍体重、体长和尾长的影响 | 第45-46页 |
2.4.4 西玛津对中华大蟾蜍变态发育的影响 | 第46-48页 |
2.4.5 西玛津对中华大蟾蜍性腺发育的影响 | 第48-50页 |
2.4.5.1 中华大蟾蜍的性腺组织学观察 | 第48-50页 |
2.4.5.2 西玛津对中华大蟾蜍性别比例和性腺形态的影响 | 第50页 |
2.5 本章小结 | 第50-52页 |
第三章 西玛津对非洲爪蟾生长发育和肝脏相关基因表达的影响 | 第52-70页 |
3.1 引言 | 第52-54页 |
3.1.1 评价内分泌干扰作用的非洲爪蟾模型 | 第52页 |
3.1.2 非洲爪蟾应用于污染物发育毒性的研究 | 第52-54页 |
3.1.3 非洲爪蟾的性腺组织形态 | 第54页 |
3.2 实验材料和仪器设备 | 第54-55页 |
3.2.1 主要试剂 | 第54-55页 |
3.2.2 实验仪器 | 第55页 |
3.2.3 实验动物 | 第55页 |
3.3 实验方法 | 第55-59页 |
3.3.1 实验动物非洲爪蟾的饲养和管理 | 第56页 |
3.3.2 暴露实验设计 | 第56-57页 |
3.3.3 一般生长指标观察 | 第57页 |
3.3.4 组织切片样本的制备 | 第57页 |
3.3.5 组织切片的制备 | 第57页 |
3.3.6 生长发育的主要评价指标 | 第57-58页 |
3.3.7 肝脏组织RNA的提取 | 第58页 |
3.3.8 cDNA的合成 | 第58页 |
3.3.9 引物设计 | 第58页 |
3.3.10 Q-RT-PCR反应 | 第58-59页 |
3.3.11 统计方法 | 第59页 |
3.4 结果与分析 | 第59-68页 |
3.4.1 西玛津的实际检测浓度 | 第59页 |
3.4.2 非洲爪蟾的死亡率 | 第59页 |
3.4.3 非洲爪蟾的一般生长指标 | 第59-61页 |
3.4.4 西玛津对非洲爪蟾性腺发育的影响 | 第61-63页 |
3.4.4.1 非洲爪蟾的性腺系数 | 第61页 |
3.4.4.2 非洲爪蟾的性腺组织学观察 | 第61-63页 |
3.4.4.3 非洲爪蟾的性腺形态和性别比例 | 第63页 |
3.4.5 非洲爪蟾蝌蚪的变态率和变态时间 | 第63-64页 |
3.4.6 西玛津对非洲爪蟾肝脏发育的影响 | 第64-66页 |
3.4.6.1 非洲爪蟾的肝脏系数 | 第64-65页 |
3.4.6.2 非洲爪蟾的肝脏组织学观察 | 第65-66页 |
3.4.7 西玛津对非洲爪蟾肝脏基因表达的影响 | 第66-68页 |
3.5 本章小结 | 第68-70页 |
第四章 西玛津对非洲爪蟾睾丸组织杂交微阵列芯片表达谱的影响 | 第70-91页 |
4.1 引言 | 第70-71页 |
4.2 实验材料和仪器设备 | 第71-72页 |
4.2.1 芯片组织样本 | 第71页 |
4.2.2 杂交微阵列芯片 | 第71页 |
4.2.3 主要试剂 | 第71-72页 |
4.2.4 主要仪器 | 第72页 |
4.2.5 生物信息学网站及分析软件 | 第72页 |
4.3 实验方法 | 第72-74页 |
4.3.1 性腺组织RNA提取 | 第72页 |
4.3.2 探针制备及杂交 | 第72页 |
4.3.3 RT-PCR验证基因芯片结果 | 第72-74页 |
4.3.4 数据分析 | 第74页 |
4.4 结果与分析 | 第74-89页 |
4.4.1 杂交微阵列芯片扫描图 | 第75页 |
4.4.2 杂交微阵列芯片散点图 | 第75-76页 |
4.4.3 杂交微阵列芯片结果 | 第76-80页 |
4.4.4 杂交微阵列芯片聚类分析图 | 第80页 |
4.4.5 杂交微阵列芯片结果的RT-PCR验证 | 第80-82页 |
4.4.6 差异基因的Gene Ontology分析结果 | 第82-85页 |
4.4.7 差异基因的Pathway分析结果 | 第85-89页 |
4.5 本章小结 | 第89-91页 |
总结与展望 | 第91-93页 |
附录1 杂交微阵列芯片表达谱改变的详细信息 | 第93-152页 |
附录2 GO分析差异表达基因的详细结果 | 第152-168页 |
参考文献 | 第168-185页 |
致谢 | 第185-186页 |
攻读学位期间发表的学术论文 | 第186-187页 |
附件 | 第187-199页 |