| 中文摘要 | 第6-7页 |
| abstract | 第7页 |
| 英文缩略表 | 第13-14页 |
| 第一章 引言 | 第14-31页 |
| 1.1 低温对水稻的影响 | 第14-18页 |
| 1.1.1 水稻冷害的类型 | 第14-16页 |
| 1.1.2 低温对植物的影响的生理代谢基础 | 第16-18页 |
| 1.2 水稻耐冷相关基因和QTL的定位 | 第18-23页 |
| 1.2.1 水稻耐冷相关基因 | 第18-23页 |
| 1.2.2 水稻耐冷相关QTLs定位 | 第23页 |
| 1.3 RNA编辑和PPR蛋白 | 第23-30页 |
| 1.3.1 植物RNA编辑现象 | 第23-26页 |
| 1.3.2 PPR蛋白在RNA编辑中的作用 | 第26-30页 |
| 1.4 本研究的目的和意义 | 第30-31页 |
| 第二章 试验材料与方法 | 第31-45页 |
| 2.1 供试水稻材料 | 第31页 |
| 2.2 常用试验试剂与仪器 | 第31页 |
| 2.3 常见实验方法 | 第31-36页 |
| 2.3.1 DNA提取 | 第31-32页 |
| 2.3.2 RNA提取 | 第32-33页 |
| 2.3.3 引物设计 | 第33页 |
| 2.3.4 Taq酶制备及 10×PCR buffer配制 | 第33页 |
| 2.3.5 PCR扩增及电泳 | 第33-34页 |
| 2.3.6 大肠杆菌（DH5α）感受态制备及热击转化 | 第34-35页 |
| 2.3.7 农杆菌（EHA105）感受态制备及电击转化 | 第35-36页 |
| 2.4 群体构建、遗传分析与基因定位 | 第36-37页 |
| 2.5 低温处理 | 第37页 |
| 2.6 叶绿素测量 | 第37页 |
| 2.7 转基因互补功能验证 | 第37-39页 |
| 2.8 COR1亚细胞定位 | 第39-40页 |
| 2.9 COR1组织表达特异性分析 | 第40-42页 |
| 2.10 RNA编辑程度检测 | 第42-43页 |
| 2.11基因保守性分析和籼粳间分化分析 | 第43-44页 |
| 2.12 DAB染色分析 | 第44页 |
| 2.13 叶绿体透射电镜观察 | 第44-45页 |
| 第三章 结果与分析 | 第45-63页 |
| 3.1 遗传分析 | 第45页 |
| 3.2 基因定位及相关功能预测 | 第45-48页 |
| 3.3 近等基因系低温处理及功能分析 | 第48-52页 |
| 3.4 转基因互补功能验证 | 第52-55页 |
| 3.5 COR1的亚细胞定位与基因组织表达特异性分析 | 第55-56页 |
| 3.6 保守性分析和籼粳之间的分化分析 | 第56-61页 |
| 3.7 DAB染色分析 | 第61页 |
| 3.8 叶绿体透射电镜观察结果 | 第61-63页 |
| 第四章 结果讨论 | 第63-66页 |
| 4.1 COR1影响水稻苗期冷胁迫下的叶绿素含量和叶绿体发育 | 第63页 |
| 4.2 COR1定位于叶绿体并影响rps8 RNA的编辑 | 第63-64页 |
| 4.3 COR1同源基因和rps8在进化中存在关联 | 第64页 |
| 4.4 COR1基因存在籼粳之间的分化 | 第64-65页 |
| 4.5 不同温度可能影响未编辑状态核糖体S8功能的稳定性 | 第65-66页 |
| 第五章 结论 | 第66-67页 |
| 参考文献 | 第67-78页 |
| 附录 | 第78-81页 |
| 致谢 | 第81-82页 |
| 作者简历 | 第82页 |
