中文摘要 | 第5-8页 |
ABSTRACT | 第8-10页 |
常用缩略词对照表 | 第13-15页 |
引言 | 第15-17页 |
第一部分 曲古抑菌素A对卵巢癌细胞HO8910分化的影响 | 第17-30页 |
1.实验对象与材料 | 第17-22页 |
1.1 实验对象 | 第17页 |
1.2 主要试剂及耗材 | 第17-18页 |
1.3 主要仪器 | 第18-19页 |
1.4 溶液配制 | 第19-22页 |
2.实验方法 | 第22-24页 |
2.1 细胞培养 | 第22页 |
2.2 实验分组 | 第22-23页 |
2.3 倒置显微镜观察细胞形态的改变 | 第23页 |
2.4 Western blot检测Ace H3K9以及转录因子SOX2、OCT-4 和FOXA2的蛋白表达水平 | 第23-24页 |
3.统计分析 | 第24-25页 |
4.结果 | 第25-27页 |
4.1 TSA诱导HO8910细胞发生形态学变化 | 第25页 |
4.2 TSA调节干细胞标志物的表达 | 第25-27页 |
5.讨论 | 第27-30页 |
第二部分 曲古抑菌素A对卵巢癌细胞HO8910增殖的影响 | 第30-45页 |
1. 实验对象与材料 | 第30-35页 |
1.1 实验对象 | 第30页 |
1.2 主要试剂及耗材 | 第30-31页 |
1.3 主要仪器 | 第31-32页 |
1.4 溶液配制 | 第32-35页 |
2.实验方法 | 第35-39页 |
2.1 细胞培养 | 第35页 |
2.2 实验分组 | 第35-36页 |
2.3 Western blot检测cyclin D1和p21Cip1的蛋白表达水平 | 第36-37页 |
2.4 细胞增殖能力的检测 | 第37-39页 |
2.5 流式细胞术检测细胞周期 | 第39页 |
3.统计分析 | 第39页 |
4.结果 | 第39-42页 |
4.1 TSA抑制HO8910细胞增殖 | 第39-40页 |
4.2 TSA诱导HO8910细胞周期阻滞 | 第40-42页 |
5.讨论 | 第42-45页 |
第三部分 结论 | 第45-46页 |
参考文献 | 第46-50页 |
综述 组蛋白去乙酰化酶抑制剂与肿瘤治疗 | 第50-71页 |
参考文献 | 第61-71页 |
致谢 | 第71-72页 |
攻读硕士学位期间发表的论文 | 第72页 |