| 致谢 | 第5-6页 |
| 中文摘要 | 第6-9页 |
| 英文摘要 | 第9-12页 |
| 缩略词表 | 第13-18页 |
| 第一章 绪论 | 第18-26页 |
| 1 HIV转录沉默与潜伏的主要分子机制 | 第18-19页 |
| 2 HIV前病毒的转录调控 | 第19-21页 |
| 3 HIV潜伏状态下的表观修饰与转录沉默 | 第21-24页 |
| 4 RBBP4的分子特点及功能 | 第24页 |
| 5 问题的提出及解决思路 | 第24-26页 |
| 第二章 HIV感染与RBBP4的表达 | 第26-54页 |
| 1 引言 | 第26-27页 |
| 2 材料和方法 | 第27-45页 |
| 2.1 究对象 | 第27-28页 |
| 2.2 细胞株和载体 | 第28页 |
| 2.3 主要实验试剂 | 第28-30页 |
| 2.4 主要实验仪器及耗材 | 第30-31页 |
| 2.5 溶液的配制 | 第31-32页 |
| 2.6 实验方法 | 第32-45页 |
| 3 结果 | 第45-51页 |
| 3.1 RBBP4在HIV感染者以及正常对照人群的PBMCs中的表达 | 第45-46页 |
| 3.2 RBBP4在HIV感染的CEM-ss和TZM-bl细胞上的表达 | 第46-49页 |
| 3.3 RBBP4对HIV病毒颗粒产生的影响 | 第49-51页 |
| 4 讨论 | 第51-53页 |
| 5 结论 | 第53-54页 |
| 第三章 RBBP4对HIV转录调控研究 | 第54-83页 |
| 1 引言 | 第54-55页 |
| 2 材料和方法 | 第55-68页 |
| 2.1 细胞株、质粒 | 第55页 |
| 2.2 主要实验仪器和耗材 | 第55-57页 |
| 2.3 主要实验试剂 | 第57-58页 |
| 2.4 溶液的配制 | 第58页 |
| 2.5 实验方法 | 第58-68页 |
| 3 实验结果 | 第68-79页 |
| 3.1 RBBP4对HIV病毒载量及剪接转录本的影响 | 第68-70页 |
| 3.2 RBBP4对HIV LTR-luc的转录调控 | 第70页 |
| 3.3 RBBP4对NF-κB诱导的HIV LTR活性的转录调控 | 第70-71页 |
| 3.4 RBBP4对Tat介导的反式激活作用的转录调控 | 第71-72页 |
| 3.5 RBBP4与HIV LTR的结合 | 第72-74页 |
| 3.6 RBBP4与LTR上NR2F1结合位点的结合 | 第74-75页 |
| 3.7 RBBP4对RNA polymerase Ⅱ的作用研究 | 第75-78页 |
| 3.8 RBBP4过表达或干扰对细胞的周期、凋亡和增殖的影响 | 第78-79页 |
| 4 讨论 | 第79-82页 |
| 5 结论 | 第82-83页 |
| 第四章 RBBP4转录抑制和促进潜伏的机制 | 第83-103页 |
| 1 引言 | 第83-84页 |
| 2 材料和方法 | 第84-93页 |
| 2.1 细胞株和载体 | 第84-85页 |
| 2.2 主要实验仪器和耗材 | 第85-86页 |
| 2.3 主要实验试剂 | 第86-87页 |
| 2.4 实验方法 | 第87-93页 |
| 3 结果 | 第93-100页 |
| 3.1 RBBP4可与NR2F1协同抑制LTR的转录 | 第93-94页 |
| 3.2 RBBP4可募集NR2F1来抑制HIV LTR的转录 | 第94-97页 |
| 3.3 组蛋白脱乙酰化酶抑制剂TSA对RBBP4介导的转录抑制的影响 | 第97页 |
| 3.4 RBBP4对HDAC1/2在LTR上结合的影响 | 第97-99页 |
| 3.5 CEM-Bru细胞潜伏与激活状态下RBBP4相关分子在LTR上结合的变化 | 第99-100页 |
| 3.6 RBBP4对HIV潜伏的影响 | 第100页 |
| 4 讨论 | 第100-102页 |
| 5 结论 | 第102-103页 |
| 参考文献 | 第103-114页 |
| 综述 | 第114-127页 |
| 参考文献 | 第121-127页 |
| 作者简历 | 第127页 |
