| 全文主要缩略词 | 第7-9页 |
| 中文摘要 | 第9-11页 |
| 英文摘要 | 第11-13页 |
| 前言 | 第14-19页 |
| 第一部分 成体神经干细胞体外分离、培养及鉴定 | 第19-42页 |
| 1. 实验仪器与材料 | 第19-26页 |
| 1.1 实验仪器 | 第19-20页 |
| 1.2 实验材料 | 第20-21页 |
| 1.3 实验试剂 | 第21-22页 |
| 1.4 试剂配制 | 第22-26页 |
| 2. 实验方法与步骤 | 第26-35页 |
| 2.1 mfat-1转基因小鼠的制备 | 第26-27页 |
| 2.2 mfat-1小鼠和同窝阴性C57BL/6小鼠的基因型鉴定 | 第27-28页 |
| 2.3 成体神经干细胞的分离和培养 | 第28-31页 |
| 2.4 成体神经干细胞体外标记后免疫组织化学鉴定 | 第31-32页 |
| 2.5 成体神经干细胞休外诱导分化及分化表型鉴定 | 第32-33页 |
| 2.6 n-3/n-6多不饱和脂肪酸比例测定 | 第33-34页 |
| 2.7 数据分析 | 第34-35页 |
| 3. 实验结果 | 第35-41页 |
| 4. 实验小结 | 第41-42页 |
| 第二部分 mfat-1基因对体外培养的成体神经干细胞缺氧性损伤的保护作用的研究 | 第42-55页 |
| 1. 实验仪器与材料 | 第42-45页 |
| 1.1 实验仪器 | 第42-43页 |
| 1.2 实验材料 | 第43页 |
| 1.3 实验试剂 | 第43-44页 |
| 1.4 试剂配制 | 第44-45页 |
| 2. 实验方法与步骤 | 第45-50页 |
| 2.1 氯化钴体外诱导成体神经干细胞缺氧性损伤 | 第45-47页 |
| 2.2 成体神经干细胞细胞活性的测定 | 第47页 |
| 2.3 成体神经干细胞凋亡率的测定 | 第47-48页 |
| 2.4 成体神经干细胞细胞增殖率的测定 | 第48-50页 |
| 2.5 数据分析 | 第50页 |
| 3. 实验结果 | 第50-54页 |
| 4. 实验小结 | 第54-55页 |
| 第三部分 Nrf2/ARE信号通路与mfat-1基因对成体神经干细胞保护作用相关性研究 | 第55-73页 |
| 1. 实验仪器与材料 | 第55-59页 |
| 1.1 实验仪器 | 第55页 |
| 1.2 实验材料 | 第55-56页 |
| 1.3 实验试剂 | 第56-57页 |
| 1.4 试剂配制 | 第57-59页 |
| 2. 实验方法与步骤 | 第59-67页 |
| 2.1 成体神经干细胞细胞内ROS水平检测 | 第59页 |
| 2.2 成体神经干细胞单位蛋白GSH含量检测 | 第59-61页 |
| 2.3 成体神经干细胞总RNA提取 | 第61-62页 |
| 2.4 实时定量PCR检测Nrt2/ARE信号通路下游基因信使RNA表达水平 | 第62-64页 |
| 2.5 成体神经干细胞胞核胞质蛋白的提取 | 第64-65页 |
| 2.6 western blot检测Nrf2/ARE信号通路下游基因蛋白表达水平 | 第65-67页 |
| 2.7 数据分析 | 第67页 |
| 3. 实验结果 | 第67-72页 |
| 4. 实验小结 | 第72-73页 |
| 讨论 | 第73-77页 |
| 参考文献 | 第77-85页 |
| 综述 | 第85-94页 |
| 参考文献 | 第89-94页 |
| 攻读学位期间发表文章情况及科研工作情况 | 第94-95页 |
| 致谢 | 第95页 |
