| 中文摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 中英文缩略词表 | 第11-12页 |
| 引言 | 第12-14页 |
| 第一部分 SCⅡ动物模型的研究 | 第14-23页 |
| 1 研究目的 | 第14页 |
| 2 实验材料 | 第14-15页 |
| 2.1 实验动物 | 第14页 |
| 2.2 实验仪器及试剂 | 第14-15页 |
| 3 实验方法 | 第15-17页 |
| 3.1 实验动物分组 | 第15页 |
| 3.2 建立动物模型 | 第15页 |
| 3.3 取材 | 第15-16页 |
| 3.4 数字减影技术鉴定模型 | 第16页 |
| 3.5 病理切片鉴定模型 | 第16-17页 |
| 3.6 统计学分析 | 第17页 |
| 4 实验结果 | 第17-19页 |
| 4.1 数字减影技术鉴定动物模型 | 第17-18页 |
| 4.2 病理学观察 | 第18-19页 |
| 4.3 正常神经元计数 | 第19页 |
| 5 讨论 | 第19-22页 |
| 6 小结 | 第22-23页 |
| 第二部分 活血养血汤干预对兔SCⅡ水肿、Ca~(2+)浓度的影响 | 第23-29页 |
| 1 研究目的 | 第23页 |
| 2 实验材料 | 第23-24页 |
| 2.1 实验动物 | 第23页 |
| 2.2 实验仪器及试剂 | 第23-24页 |
| 3 实验方法 | 第24-25页 |
| 3.1 药物制备 | 第24页 |
| 3.2 动物分组与给药 | 第24页 |
| 3.3 动物模型建立及取材 | 第24页 |
| 3.4 脊髓组织标本中水含量的测定 | 第24页 |
| 3.5 脊髓组织标本中Ca~(2+)的检测 | 第24-25页 |
| 3.6 统计学分析 | 第25页 |
| 4 实验结果 | 第25-26页 |
| 4.1 脊髓组织标本中水含量 | 第25-26页 |
| 4.2 脊髓组织标本中Ca~(2+)浓度 | 第26页 |
| 5 讨论 | 第26-28页 |
| 6 小结 | 第28-29页 |
| 第三部分 活血养血汤干预对兔SCⅡ模型cytc-caspase-3介导的细胞凋亡通路的影响 | 第29-46页 |
| 1 研究目的 | 第29页 |
| 2 实验材料 | 第29-30页 |
| 2.1 实验动物 | 第29页 |
| 2.2 实验仪器及试剂 | 第29-30页 |
| 3 实验方法 | 第30-35页 |
| 3.1 药物制备、动物分组给药、造模 | 第30页 |
| 3.2 取材 | 第30页 |
| 3.3 免疫组化法测定组织标本中Cytc、HSP70、Bcl-2、Bax | 第30-31页 |
| 3.4 酶联免疫法检测组织标本中HSP70、Bcl-2、Bax的含量 | 第31-32页 |
| 3.5 TUNEL法对脊髓神经细胞凋亡形态学研究 | 第32-33页 |
| 3.6 反转录PCR法检测脊髓组织标本Caspase-3 | 第33-35页 |
| 3.7 统计学分析 | 第35页 |
| 4 实验结果 | 第35-40页 |
| 4.1 造模情况 | 第35页 |
| 4.2 免疫组化法检测脊髓组织标本Cytc、HSP70、Bcl-2、Bax | 第35-38页 |
| 4.3 酶联免疫法测定脊髓组织标本中HSP70、Bcl-2、Bax的含量 | 第38-39页 |
| 4.4 TUNEL法检测脊髓神经细胞凋亡 | 第39-40页 |
| 4.5 RT-PCR对脊髓组织标本中Caspase-3的检测 | 第40页 |
| 5 讨论 | 第40-45页 |
| 6 小结 | 第45-46页 |
| 结论 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-51页 |
| 文献综述 | 第51-56页 |
| 参考文献 | 第54-56页 |
| 致谢 | 第56-57页 |
| 作者简历 | 第57页 |
