| 摘要 | 第10-12页 |
| Abstract | 第12-14页 |
| 缩略语 | 第15-16页 |
| 前言 | 第16-19页 |
| 参考文献 | 第17页 |
| 拟解决的科学问题 | 第17-19页 |
| 第一章 文献综述 | 第19-39页 |
| 1 当归补血汤运用于组织创伤修复的中医理论基础 | 第19-22页 |
| 1.1 当归补血汤方解 | 第19页 |
| 1.2 应用 | 第19-22页 |
| 2 当归补血汤运用于组织创伤修复的作用机理初探 | 第22-26页 |
| 2.1 促进创面的血液循环 | 第23-24页 |
| 2.2 调节创面免疫功能 | 第24-25页 |
| 2.3 细胞生长周期 | 第25页 |
| 2.4 细胞凋亡 | 第25-26页 |
| 3 基于JAK2-STAT3信号通路的组织创伤修复研究进展 | 第26-32页 |
| 3.1 JAK-STAT信号通路中的组分 | 第26-28页 |
| 3.2 信号通路的传导途径 | 第28页 |
| 3.3 信号转导通路与疾病 | 第28-29页 |
| 3.4 JAK-STAT信号通路与组织创伤后的炎症反应的关系 | 第29页 |
| 3.5 抑制JAK-STATs信号通路对组织细胞活性的影响 | 第29-30页 |
| 3.6 JAK-STATs信号通路在组织创伤修复中血管生成的作用 | 第30-32页 |
| 4 中药联合功能性生物材料运用于组织创伤修复的研究进展 | 第32-33页 |
| 参考文献 | 第33-39页 |
| 第二章 当归补血复合复合微囊胶原海绵制备工艺研究 | 第39-46页 |
| 1 材料与仪器 | 第39页 |
| 1.1 材料 | 第39页 |
| 1.2 仪器 | 第39页 |
| 2 方法与结果 | 第39-44页 |
| 2.1 微囊胶原海绵的制备 | 第39-40页 |
| 2.2 微囊的粒径分布测定与形态观察 | 第40-41页 |
| 2.3 复合微囊胶原海绵中阿魏酸和黄芪甲苷含量的测定 | 第41-42页 |
| 2.4 复合微囊与复合微囊胶原海绵释放度的测定 | 第42-44页 |
| 3 载药微囊胶原海绵的测定结果 | 第44-45页 |
| 4 结论 | 第45-46页 |
| 第三章 黄芪甲苷、阿魏酸及AG490对人脐血管内皮细胞增殖的影响的实验研究 | 第46-52页 |
| 1 实验目的 | 第46页 |
| 2 实验材料与仪器 | 第46页 |
| 2.1 实验材料 | 第46页 |
| 2.2 实验试剂 | 第46页 |
| 2.3 实验仪器 | 第46页 |
| 3 实验方法与操作步骤 | 第46-47页 |
| 3.1 细胞转染 | 第46页 |
| 3.2 铺板 | 第46-47页 |
| 3.3 加药 | 第47页 |
| 3.4 CCK8检测细胞活力 | 第47页 |
| 4 实验结果 | 第47-51页 |
| 5 结论 | 第51-52页 |
| 第四章 当归补血复合微囊经JAK2/STAT3信号传导对人脐静脉血管内皮细胞增殖作用的实验研究 | 第52-67页 |
| 1 实验材料与仪器 | 第52-53页 |
| 1.1 实验材料 | 第52-53页 |
| 1.2 实验试剂 | 第53页 |
| 1.3 实验仪器 | 第53页 |
| 2 实验方法 | 第53-56页 |
| 2.1 当归补血复合微囊对人脐静脉血管内皮细胞(HUVEC)增殖作用研究 | 第53-54页 |
| 2.2 JAK抑制剂AG490对当归补血复合微囊促进HUVEC细胞活力的影响 | 第54页 |
| 2.3 JAK抑制剂AG490对当归补血复合微囊抑制HUVEC细胞凋亡的影响 | 第54-55页 |
| 2.4 Western blot检测STAT3、VEGF | 第55页 |
| 2.5 VEGF mRNA以及miRNA-21表达检测 | 第55-56页 |
| 3 实验结果 | 第56-64页 |
| 3.1 当归补血复合微囊对HUVEC增殖作用研究 | 第56-57页 |
| 3.2 JAK抑制剂AG490对当归补血复合微囊促进HUVEC细胞活力的影响 | 第57-58页 |
| 3.3 JAK抑制剂AG490对当归补血复合微囊抑制HUVEC细胞凋亡的影响 | 第58-60页 |
| 3.4 Western blot检测STAT3、VEGF | 第60-61页 |
| 3.5 VEGF mRNA以及miRNA-21基因表达 | 第61-64页 |
| 4 讨论 | 第64-65页 |
| 参考文献 | 第65-67页 |
| 第五章 当归补血复合微囊对局部创伤促血管新生的实验研究 | 第67-85页 |
| 第一节 当归补血复合微囊促进鸡胚绒毛尿囊膜血管新生的实验研究 | 第67-71页 |
| 1. 实验目的 | 第67页 |
| 2. 实验材料与仪器 | 第67页 |
| 2.1 实验细胞 | 第67页 |
| 2.2 实验试剂 | 第67页 |
| 2.3 实验仪器 | 第67页 |
| 3. 实验方法 | 第67-68页 |
| 3.1 鸡胚预准备 | 第67页 |
| 3.2 给药 | 第67-68页 |
| 3.3 拍照并统计血管数 | 第68页 |
| 4. 实验结果 | 第68-70页 |
| 5. 结论 | 第70-71页 |
| 第二节 当归补血复合微囊对SD大鼠损伤模型中的促进血管新生作用的研究 | 第71-83页 |
| 1 实验材料与仪器 | 第71-73页 |
| 1.1 实验材料 | 第71页 |
| 1.2 实验试剂 | 第71-72页 |
| 1.3 实验仪器 | 第72-73页 |
| 2 实验方法 | 第73-75页 |
| 2.1 SD大鼠损伤模型的建立 | 第73页 |
| 2.2 动物分组 | 第73页 |
| 2.3 标本采集 | 第73-74页 |
| 2.4 生化法检测肉芽组织中羟脯氨酸含量 | 第74页 |
| 2.5 组织切片染色数据统计与分析 | 第74页 |
| 2.6 Western blot检测p-STAT3、VEGF蛋白表达 | 第74页 |
| 2.7 VEGF mRNA以及miRNA表达检测 | 第74-75页 |
| 3 实验结果 | 第75-82页 |
| 3.1 肉芽组织中羟脯氨酸含量的变化 | 第75-76页 |
| 3.2 病理HE染色观察在SD大鼠损伤模型中观察研究肉芽组织中改变 | 第76-77页 |
| 3.3 免疫组化CD34染色观察的毛细血管密度 | 第77-78页 |
| 3.4 masson染色观察组织胶原含量 | 第78页 |
| 3.5 Western blot检测p-STAT3、VEGF | 第78-79页 |
| 3.6 当归补血复合微囊对VEGF mRNA以及miRNA-21基因表达的影响 | 第79-82页 |
| 4 结论 | 第82-83页 |
| 参考文献 | 第83-85页 |
| 结语 | 第85-89页 |
| 本文的创新点 | 第87页 |
| 问题与展望 | 第87-89页 |
| 攻读博士学位期间取得的研究成果 | 第89-90页 |
| 攻读博士学位期间取得的学术成果 | 第89页 |
| 攻读博士学位期间参与的主要科研项目 | 第89-90页 |
| 致谢 | 第90-91页 |
| 作者简介 | 第91-92页 |
| 主要学习经历 | 第91页 |
| 主要工作经历 | 第91页 |
| 攻读学位期间获得的其他奖励 | 第91页 |
| 攻读博士学位期间取得的其他学术成果 | 第91-92页 |
