| 摘要 | 第1-4页 |
| ABSTRACT | 第4-8页 |
| 第一章 绪论 | 第8-20页 |
| ·玻璃海鞘概述 | 第9页 |
| ·玻璃海鞘的作用 | 第9-12页 |
| ·发育和进化生物学研究价值 | 第9-10页 |
| ·营养成分分析及相关生物功能 | 第10-12页 |
| ·微生物发酵条件优化概述 | 第12-16页 |
| ·培养基的优化 | 第13-14页 |
| ·培养条件的优化 | 第14页 |
| ·实验设计与分析在条件优化中的应用 | 第14-16页 |
| ·蛋白质复性技术研究进展 | 第16-18页 |
| ·蛋白质复性机制 | 第16页 |
| ·蛋白质复性方法 | 第16-17页 |
| ·复性辅助剂 | 第17-18页 |
| ·选题背景及课题研究内容 | 第18-20页 |
| 第二章 重组CS5931大肠杆菌表达体系发酵条件优化 | 第20-34页 |
| ·前言 | 第20页 |
| ·实验材料、试剂与仪器 | 第20-21页 |
| ·实验材料 | 第20页 |
| ·实验试剂 | 第20-21页 |
| ·实验仪器 | 第21页 |
| ·实验方法 | 第21-23页 |
| ·相关溶液配制 | 第21-22页 |
| ·培养方法 | 第22页 |
| ·单因素实验设计 | 第22页 |
| ·中心组合实验设计 | 第22-23页 |
| ·检测方法 | 第23页 |
| ·结果与分析 | 第23-32页 |
| ·重组大肠杆菌BL21(DE3)/pET21a-CS5931的生长曲线 | 第23-24页 |
| ·单因素实验筛选 | 第24-29页 |
| ·Plackett-Burman设计筛选影响表达收率的显著因素 | 第29-30页 |
| ·响应面中心组合设计确定显著因素的最优水平 | 第30-32页 |
| ·验证实验 | 第32页 |
| ·讨论 | 第32-33页 |
| ·本章小结 | 第33-34页 |
| 第三章 重组萨氏海鞘多肽CS5931的分离纯化条件优化 | 第34-42页 |
| ·前言 | 第34页 |
| ·实验材料、试剂与仪器 | 第34-35页 |
| ·实验材料 | 第34页 |
| ·实验试剂 | 第34-35页 |
| ·实验仪器 | 第35页 |
| ·实验方法 | 第35-39页 |
| ·相关溶液配制 | 第35-36页 |
| ·未变性重组萨氏海鞘多肽CS5931的纯化 | 第36-37页 |
| ·变性重组萨氏海鞘多肽CS5931的纯化 | 第37页 |
| ·重组萨氏海鞘多肽CS5931的复性冻干 | 第37页 |
| ·重组多肽的浓度测定 | 第37-38页 |
| ·MTT比色法 | 第38-39页 |
| ·结果与分析 | 第39-41页 |
| ·重组萨氏海鞘多肽CS5931的纯化条件优化 | 第39-40页 |
| ·重组萨氏海鞘多肽CS5931复性方法的确定 | 第40-41页 |
| ·讨论 | 第41页 |
| ·本章小结 | 第41-42页 |
| 第四章 重组萨氏海鞘多肽CS5931抗瘤谱研究 | 第42-54页 |
| ·前言 | 第42页 |
| ·实验材料、试剂与仪器 | 第42-43页 |
| ·实验材料 | 第42页 |
| ·实验试剂 | 第42页 |
| ·实验仪器 | 第42-43页 |
| ·实验方法 | 第43页 |
| ·相关溶液配制 | 第43页 |
| ·MTT法检测重组萨氏海鞘多肽CS5931对肿瘤细胞的增殖影响 | 第43页 |
| ·结果与分析 | 第43-51页 |
| ·重组萨氏海鞘多肽CS5931对人癌细胞的抑制作用 | 第43-50页 |
| ·重组萨氏海鞘多肽CS5931对人正常细胞(人胚肺成纤维细胞细胞HFL1)的作用 | 第50-51页 |
| ·讨论 | 第51-52页 |
| ·本章小结 | 第52-54页 |
| 结论 | 第54-56页 |
| 参考文献 | 第56-60页 |
| 致谢 | 第60-62页 |
| 攻读学位期间发表学术论文目录 | 第62-65页 |
