| 中文摘要 | 第1-4页 |
| Abstract | 第4-10页 |
| 主要符号表 | 第10-11页 |
| 第一章 引言 | 第11-26页 |
| ·海蛾概述 | 第11-14页 |
| ·海蛾 | 第11-12页 |
| ·海蛾化学成分研究 | 第12页 |
| ·海蛾药理活性研究 | 第12-14页 |
| ·海洋抗肿瘤药物的研究进展 | 第14-22页 |
| ·抗肿瘤化合物的研究现状 | 第14-17页 |
| ·有效成分的分离纯化技术 | 第17-19页 |
| ·溶剂提取法 | 第17-18页 |
| ·吸附层析分离技术 | 第18页 |
| ·高速逆流色谱分离技术 | 第18-19页 |
| ·超滤膜分离技术 | 第19页 |
| ·分子蒸馏技术 | 第19页 |
| ·活性筛选技术 | 第19-22页 |
| ·四氮唑盐酶还原法 | 第20页 |
| ·CCK-8法 | 第20页 |
| ·放射性标记代谢物前体掺入法 | 第20-21页 |
| ·荧光分析法 | 第21页 |
| ·三磷酸腺苷生物荧光肿瘤药敏检测技术 | 第21-22页 |
| ·细胞凋亡的过程与机理 | 第22-24页 |
| ·促进肿瘤细胞凋亡 | 第22页 |
| ·诱导肿瘤细胞分化 | 第22-23页 |
| ·调控细胞周期 | 第23页 |
| ·抑制肿瘤细胞端粒酶活性 | 第23页 |
| ·影响肿瘤细胞的物质代谢 | 第23-24页 |
| ·本课题的主要研究内容及创新之处 | 第24-26页 |
| ·本课题的研究背景及立论依据 | 第24页 |
| ·本课题的主要研究内容 | 第24-25页 |
| ·本课题的主要创新之处 | 第25-26页 |
| 第二章 海蛾抗宫颈癌活性成分的分离纯化 | 第26-42页 |
| ·材料与仪器 | 第26-28页 |
| ·材料 | 第26页 |
| ·仪器 | 第26-27页 |
| ·溶液配制 | 第27-28页 |
| ·实验方法 | 第28-33页 |
| ·海蛾乙醇提取物和水提取物的制备 | 第28页 |
| ·海蛾乙醇提取物的硅胶柱分离 | 第28-29页 |
| ·装柱 | 第28页 |
| ·分离 | 第28-29页 |
| ·细胞培养 | 第29-30页 |
| ·传代 | 第29页 |
| ·保种 | 第29页 |
| ·复苏 | 第29页 |
| ·计数 | 第29-30页 |
| ·海蛾粗提物的抗宫颈癌活性评价 | 第30-31页 |
| ·母液制备 | 第30页 |
| ·MTT法检测海蛾粗提物对Hela细胞的生长抑制作用 | 第30-31页 |
| ·组分A_2和A_3的硅胶柱分离 | 第31页 |
| ·分离 | 第31页 |
| ·A_2和A_3各组分的抗宫颈癌活性评价 | 第31页 |
| ·Sephadex LH-20柱分离 | 第31-32页 |
| ·装柱 | 第31-32页 |
| ·分离 | 第32页 |
| ·各分离组分的抗宫颈癌活性评价 | 第32页 |
| ·组分C_(322)的HPLC分析 | 第32-33页 |
| ·HPLC分离条件的选择 | 第32页 |
| ·HPLC定性分析 | 第32-33页 |
| ·统计学分析 | 第33页 |
| ·结果与讨论 | 第33-40页 |
| ·海蛾粗提物的制备 | 第33页 |
| ·海蛾粗提物的抗宫颈癌活性评价 | 第33-36页 |
| ·细胞形态学观察 | 第33-34页 |
| ·海蛾粗提物对Hela细胞的生长抑制作用 | 第34-36页 |
| ·组分A_2和A_3的硅胶柱分离 | 第36页 |
| ·A_2和A_3各分离组分的抗宫颈癌活性评价 | 第36-38页 |
| ·组分B_(32)的Sephadex LH-20葡聚糖凝胶分离 | 第38-39页 |
| ·B_(32)各分离组分的抗宫颈癌活性评价 | 第39-40页 |
| ·组分C_(322)的HPLC分析 | 第40页 |
| ·本章小结 | 第40-42页 |
| 第三章 组分C_(322)对宫颈癌HeLa细胞作用机制探讨 | 第42-54页 |
| ·材料与仪器 | 第42页 |
| ·材料 | 第42页 |
| ·仪器 | 第42页 |
| ·实验方法 | 第42-45页 |
| ·MTT法检测组分C_(322)对HeLa细胞的生长抑制作用 | 第42页 |
| ·AO/EB染色 | 第42-43页 |
| ·PI染色检测细胞周期分布 | 第43页 |
| ·流式细胞仪检测细胞凋亡 | 第43-44页 |
| ·Caspase 3/8/9酶活性检测 | 第44-45页 |
| ·结果与讨论 | 第45-52页 |
| ·组分C_(322)对HeLa细胞增殖的抑制作用 | 第45-46页 |
| ·AO/EB染色观察 | 第46-47页 |
| ·PI染色检测细胞周期分布 | 第47-48页 |
| ·流式细胞仪检测细胞凋亡 | 第48-50页 |
| ·Caspase 3/8/9酶活性检测 | 第50-52页 |
| ·本章小结 | 第52-54页 |
| 第四章 海蛾粗提物的药效学实验研究 | 第54-67页 |
| ·材料与仪器 | 第54-55页 |
| ·材料 | 第54-55页 |
| ·仪器 | 第55页 |
| ·实验系统 | 第55页 |
| ·实验方法 | 第55-59页 |
| ·剂量设计与供试品配制 | 第55-56页 |
| ·抗疲劳 | 第56页 |
| ·对小鼠转棒试验的影响 | 第56页 |
| ·对小鼠游泳耐力试验的影响 | 第56页 |
| ·免疫调节作用 | 第56-58页 |
| ·二硝基氟苯(DNFB)诱导迟发型变态反应(DTH) | 第56-57页 |
| ·小鼠碳廓清试验和免疫器官/体重比值测定 | 第57页 |
| ·血清溶血素的测定 | 第57页 |
| ·ConA诱导的小鼠脾淋巴细胞转化试验 | 第57-58页 |
| ·抗炎 | 第58页 |
| ·壮阳作用 | 第58-59页 |
| ·抗哮喘作用(离体实验) | 第59页 |
| ·统计学分析 | 第59页 |
| ·结果与讨论 | 第59-65页 |
| ·小鼠抗疲劳试验 | 第59-60页 |
| ·小鼠转棒试验 | 第59-60页 |
| ·小鼠负重游泳试验 | 第60页 |
| ·免疫调节作用 | 第60-63页 |
| ·小鼠迟发型变态反应 | 第60-61页 |
| ·小鼠碳廓清试验和免疫器官/体重比值测定 | 第61-62页 |
| ·血清溶血素的测定 | 第62页 |
| ·小鼠脾淋巴细胞转化试验 | 第62-63页 |
| ·抗炎实验 | 第63页 |
| ·壮阳作用 | 第63-64页 |
| ·抗哮喘作用 | 第64-65页 |
| ·本章小结 | 第65-67页 |
| 结论与展望 | 第67-69页 |
| 结论 | 第67-68页 |
| 展望 | 第68-69页 |
| 参考文献 | 第69-75页 |
| 致谢 | 第75-76页 |
| 个人简历 | 第76页 |
