| 致谢 | 第1-6页 |
| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-11页 |
| 目次 | 第11-14页 |
| 图清单 | 第14-15页 |
| 表清单 | 第15-16页 |
| 1 绪论 | 第16-27页 |
| ·引言 | 第16-17页 |
| ·新蚜虫疠霉的生物学特性和研究现状 | 第17-19页 |
| ·新蚜虫疠霉概述 | 第17页 |
| ·分离和培养 | 第17-18页 |
| ·致病机制和侵染循环 | 第18-19页 |
| ·刺探电位图谱技术 | 第19-22页 |
| ·刺探电位图谱技术发展简史 | 第19-20页 |
| ·EPG 的工作原理 | 第20-22页 |
| ·EPG 实验的影响因素 | 第22页 |
| ·实时荧光定量PCR研究进展 | 第22-25页 |
| ·实时荧光定量 PCR 工作原理 | 第22-23页 |
| ·qPCR 特点： | 第23-24页 |
| ·qPCR 的定量方法 | 第24页 |
| ·qPCR 研究感病桃蚜体内新蚜虫疠霉 DNA 增殖的研究进展 | 第24-25页 |
| ·本课题的研究内容和研究意义 | 第25-26页 |
| ·论文的内容安排 | 第26-27页 |
| 2 感染新蚜虫疠霉桃蚜的获得及其 EPG 观察 | 第27-46页 |
| ·材料和方法 | 第27-32页 |
| ·供试感病蚜虫的获得 | 第27-28页 |
| ·供试植物 | 第28页 |
| ·EPG 试验所用的试剂材料 | 第28页 |
| ·实验方法 | 第28-32页 |
| ·数据分析方法 | 第32页 |
| ·结果分析 | 第32-44页 |
| ·弹孢感病供试桃蚜的获得 | 第32-33页 |
| ·记录到的 EPG 波形图 | 第33-34页 |
| ·桃蚜受新蚜虫疠霉感染死亡前 16 小时与正常桃蚜的各种表征参数的比较 | 第34-39页 |
| ·桃蚜受新蚜虫疠霉感染后 6 小时与正常桃蚜的各种表征参数的比较 | 第39-44页 |
| ·讨论 | 第44-46页 |
| 3 利用实时荧光定量 PCR 筛选新蚜虫疠霉内参基因 | 第46-58页 |
| ·材料 | 第47-48页 |
| ·菌株来源 | 第47页 |
| ·化学试剂 | 第47页 |
| ·培养基 | 第47页 |
| ·主要仪器 | 第47页 |
| ·样品准备 | 第47-48页 |
| ·方法 | 第48-50页 |
| ·总 RNA 的提取 | 第48页 |
| ·cDNA 第一条链生成 | 第48-49页 |
| ·候选内参基因的选择和引物设计 | 第49页 |
| ·实时荧光定量 PCR | 第49页 |
| ·数据处理和分析 | 第49-50页 |
| ·结果与分析 | 第50-55页 |
| ·新蚜虫疠霉 4 种不同生长阶段样品的获得 | 第50-51页 |
| ·候选内参基因引物扩增效率及特异性 | 第51-52页 |
| ·候选内参基因的稳定性分析 | 第52-55页 |
| ·讨论 | 第55-57页 |
| ·总结论 | 第57-58页 |
| 4 qPCR 检测感病桃蚜体内新蚜虫疠霉的增殖 | 第58-64页 |
| ·材料 | 第58页 |
| ·实验桃蚜 | 第58页 |
| ·主要仪器 | 第58页 |
| ·主要试剂 | 第58页 |
| ·实验方法 | 第58-60页 |
| ·感病蚜虫总 DNA 的提取 | 第58-59页 |
| ·Chelex 100 提取方法 | 第59页 |
| ·利用 qPCR 检测桃蚜体内新蚜虫疠霉的增殖 | 第59-60页 |
| ·结果与分析 | 第60-62页 |
| ·两种方法提取 DNA 的浓度纯度 | 第60-61页 |
| ·实时荧光定量 PCR 结果 | 第61页 |
| ·相对表达量的计算及其生长增殖的模型模拟 | 第61-62页 |
| ·讨论 | 第62-64页 |
| 5 总讨论 | 第64-68页 |
| ·总结 | 第64-66页 |
| ·创新点 | 第66页 |
| ·展望 | 第66-68页 |
| 参考文献 | 第68-74页 |
| 作者简历 | 第74页 |
