| 摘要 | 第1-3页 |
| Abstract | 第3-6页 |
| 引言 | 第6-7页 |
| 第一章 实验材料 | 第7-10页 |
| ·主要试剂和材料 | 第7-9页 |
| ·细胞株 | 第9页 |
| ·仪器设备 | 第9-10页 |
| 第二章 实验方法 | 第10-16页 |
| ·HUVEC细胞的传代培养 | 第10页 |
| ·预实验筛选oxLDL造模浓度以及齐墩果酸保护作用浓度 | 第10-11页 |
| ·筛选oxLDL造模浓度 | 第10页 |
| ·筛选OA作用有效作用浓度 | 第10页 |
| ·筛选Vit E作用有效作用浓度 | 第10-11页 |
| ·实验分组及oxLDL处理 | 第11页 |
| ·实验项目和指标检测 | 第11-16页 |
| ·SOD、MDA、GSH活性及含量测定 | 第11页 |
| ·DCFH-DA荧光标记探针法检测ROS的动态释放 | 第11页 |
| ·荧光定量PCR(Real-time PCR) | 第11-13页 |
| ·免疫印迹(Western blot) | 第13-15页 |
| ·LOX-1基因沉默 | 第15-16页 |
| ·统计学分析 | 第16页 |
| 第三章 实验结果 | 第16-34页 |
| ·MTT法筛选oxLDL造模浓度以及齐墩果酸、维生素E保护作用浓度 | 第16-18页 |
| ·OA对细胞内GSH含量、SOD活力和MDA含量的影响 | 第18页 |
| ·OA对oxLDL诱导的HUVEC细胞ROS水平的影响 | 第18-20页 |
| ·oxLDL诱导HUVEC细胞内LOX-1、gp91phox、p67phox、p47phox、HO-1蛋白表达的经时变化 | 第20-22页 |
| ·oxLDL诱导HUVEC细胞内LOX-1蛋白表达的经时变化 | 第21页 |
| ·oxLDL诱导HUVEC细胞gp91phox、p67phox、p47phox蛋白表达的经时变化 | 第21页 |
| ·oxLDL诱导HUVEC细胞内HO-1蛋白表达的经时变化 | 第21-22页 |
| ·OA对oxLDL诱导的HUVEC细胞内LOX-1 mRNA及蛋白表达的影响 | 第22-25页 |
| ·OA对oxLDL诱导的HUVEC细胞内NADPH氧化酶亚基mRNA及蛋白表达的影响 | 第25-28页 |
| ·OA对oxLDL诱导的HUVEC细胞核内Nrf2蛋白和HO-1蛋白表达的影响 | 第28-29页 |
| ·慢病毒转染HUVEC及沉默效率检测 | 第29-30页 |
| ·Real-time PCR检测各组LOX-1 mRNA的抑制效率 | 第29页 |
| ·Western blot检测LOX-1蛋白的抑制效率 | 第29-30页 |
| ·MTT检测LOX-1基因沉默对oxLDL诱导的HUVEC细胞生存率下降的影响 | 第30-31页 |
| ·LOX-1基因沉默对oxLDL诱导的ROS生成的影响 | 第31-32页 |
| ·LOX-1基因沉默后用oxLDL(200μg/mL)刺激,HUVEC细胞内LOX-1蛋白的表达 | 第32页 |
| ·LOX-1基因沉默后用oxLDL(200μg/mL)刺激,HUVEC细胞内NADPH氧化酶亚基gp91phox、p47phox、p67phox蛋白的表达 | 第32-33页 |
| ·LOX-1基因沉默后用oxLDL(200μg/mL)刺激,HUVEC细胞核内Nrf2蛋白和HO-1蛋白的表达 | 第33-34页 |
| 第四章 讨论 | 第34-40页 |
| 结论 | 第40-41页 |
| 参考文献 | 第41-47页 |
| 综述 | 第47-64页 |
| 综述的参考文献 | 第57-64页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第64-65页 |
| 致谢 | 第65-66页 |
