鹿茸多肽对促神经母细胞瘤细胞增殖及抑制其凋亡的相关实验研究
| 中文摘要 | 第1-8页 |
| ABSTRACT | 第8-10页 |
| 英文缩略语 | 第10-11页 |
| 前言 | 第11-12页 |
| 文献综述 | 第12-20页 |
| 1 神经母细胞瘤 | 第12-14页 |
| ·神经母细胞瘤流行病学调查 | 第12页 |
| ·神经母细胞瘤的临床表现、病因以及诊治的方法 | 第12-13页 |
| ·对神经母细胞瘤治疗发展的中、西方现状比较 | 第13-14页 |
| 2 神经母细胞瘤细胞 | 第14-16页 |
| ·目前国、内外对神经母细胞瘤细胞最新的研究进展 | 第14-15页 |
| ·关于 Bcl-2 与 Bax 的基本概述 | 第15-16页 |
| 3 鹿茸与鹿茸多肽 | 第16-20页 |
| ·鹿茸基本情况概述 | 第16-17页 |
| ·鹿茸多肽国、内外最新研究进展 | 第17-18页 |
| ·鹿茸多肽功能 | 第18-19页 |
| ·鹿茸多肽的消炎作用 | 第18页 |
| ·鹿茸多肽促进创伤的愈合 | 第18页 |
| ·鹿茸多肽对神经损伤治疗有明显的作用 | 第18页 |
| ·鹿茸多肽可提高人体免疫力 | 第18-19页 |
| ·鹿茸多肽的抗氧化作用 | 第19页 |
| ·鹿茸多肽对性功能也具有明显的作用 | 第19页 |
| ·展望梅花鹿茸在临床上的应用 | 第19-20页 |
| 实验研究 | 第20-34页 |
| 一 细胞的培养以及表型鉴定 | 第20-21页 |
| 1 实验材料 | 第20页 |
| ·实验细胞 | 第20页 |
| ·实验试剂 | 第20页 |
| ·主要仪器以及设备 | 第20页 |
| 2 实验方法 | 第20-21页 |
| ·神经母细胞瘤细胞的清洗换液 | 第20页 |
| ·神经母细胞瘤细胞的消化分散 | 第20-21页 |
| 3 细胞表型鉴定 | 第21页 |
| 二 鹿茸多肽对神经母细胞瘤细胞增殖的实验研究 | 第21-24页 |
| 1 实验材料 | 第21-22页 |
| ·实验细胞 | 第21页 |
| ·实验试剂 | 第21页 |
| ·主要仪器以及设备 | 第21-22页 |
| 2 实验方法 | 第22-24页 |
| ·贴壁细胞 | 第22页 |
| ·部分试剂配制 | 第22页 |
| ·细胞计数点板 | 第22-23页 |
| ·96 孔板加药 | 第23页 |
| ·活性检测 | 第23-24页 |
| ·细胞增殖结果 | 第24页 |
| 三 鹿茸多肽对神经母细胞瘤细胞凋亡抑制作用的研究 | 第24-27页 |
| 1 实验材料 | 第24-25页 |
| ·实验细胞 | 第24-25页 |
| ·试剂 | 第25页 |
| ·主要仪器以及设备 | 第25页 |
| 2 流式细胞仪检测神经母细胞瘤细胞的凋亡作用 | 第25-26页 |
| ·细胞培养 | 第25页 |
| ·流式细胞仪检测的具体步骤 | 第25-26页 |
| ·上机测试 | 第26页 |
| ·结果判定 | 第26页 |
| 3 不同剂量鹿茸多肽对神经母细胞瘤细胞的凋亡影响 | 第26-27页 |
| 四 鹿茸多肽作用于神经母细胞瘤细胞的机制研究 | 第27-34页 |
| 1 实验材料 | 第27-29页 |
| ·DNAmarker | 第27页 |
| ·PCR 引物 | 第27-28页 |
| ·抗体 | 第28页 |
| ·实验细胞 | 第28页 |
| ·主要试剂 | 第28页 |
| ·主要仪器以及设备 | 第28-29页 |
| 2 实验方法 | 第29-31页 |
| ·细胞培养 | 第29页 |
| ·细胞总 RNA 提取 | 第29-30页 |
| ·RT-PCR 逆转录-聚合酶链反应 | 第30页 |
| ·RT-PCR 反应液配制 | 第30页 |
| ·产物鉴定 | 第30页 |
| ·数据处理 | 第30页 |
| ·DNA 琼脂糖电泳 | 第30-31页 |
| 3 结果判定 | 第31-34页 |
| ·RT-PCR 测定 Bcl-2 结果 | 第31-32页 |
| ·RT-PCR 测定 Bax 结果 | 第32-34页 |
| 讨论 | 第34-37页 |
| 结语 | 第37-38页 |
| 致谢 | 第38-39页 |
| 参考文献 | 第39-43页 |
| 附图 | 第43-46页 |
