| 中文摘要 | 第1-7页 |
| ABSTRACT | 第7-10页 |
| 缩略语对照表 | 第10-11页 |
| 1 前言 | 第11-14页 |
| 2 PVR动物模型的建立 | 第14-23页 |
| ·实验材料 | 第14-16页 |
| ·实验动物 | 第14页 |
| ·实验药品及主要试剂 | 第14页 |
| ·主要试剂配制方法 | 第14-15页 |
| ·主要实验仪器 | 第15-16页 |
| ·实验方法 | 第16-19页 |
| ·兔视网膜色素上皮(RPE)细胞的体外培养 | 第16-17页 |
| ·造模方法 | 第17页 |
| ·分组方法 | 第17-18页 |
| ·观察指标与方法 | 第18-19页 |
| ·统计方法 | 第19-20页 |
| ·实验结果与分析 | 第20-23页 |
| ·RPE细胞体外培养生长情况 | 第20页 |
| ·RPE细胞鉴定结果 | 第20页 |
| ·造模后各组眼底情况 | 第20-22页 |
| ·造模后各组视网膜增殖细胞核抗原(PCNA)表达情况 | 第22-23页 |
| 3 海昆化瘀片对RPE诱导的PVR兔玻璃体液中TGF-β表达的研究 | 第23-41页 |
| ·实验材料 | 第23-25页 |
| ·实验动物 | 第23页 |
| ·实验药品及主要试剂 | 第23-24页 |
| ·主要试剂配制方法 | 第24页 |
| ·主要实验仪器 | 第24-25页 |
| ·实验方法 | 第25-28页 |
| ·造模方法 | 第25页 |
| ·分组方法 | 第25页 |
| ·给药方法 | 第25-26页 |
| ·观察指标与方法 | 第26-28页 |
| ·统计方法 | 第28页 |
| ·实验结果与分析 | 第28-41页 |
| ·海昆化瘀片对PVR兔眼底增生程度的影响 | 第28-34页 |
| ·海昆化瘀片对PVR兔常规组织病理学的影响 | 第34-35页 |
| ·海昆化瘀片对PVR兔眼底增生膜截面积的影响 | 第35-36页 |
| ·海昆化瘀片对PVR兔眼底增生膜截面增生细胞数的影响 | 第36-37页 |
| ·海昆化瘀片对PVR兔视网膜PCNA表达情况的影响 | 第37-39页 |
| ·海昆化瘀片对PVR兔玻璃体液中TGF-β浓度的影响 | 第39页 |
| ·海昆化瘀片对PVR兔玻璃体液中bFGF浓度的影响 | 第39-41页 |
| 4 讨论 | 第41-50页 |
| ·转化生长因子β在增生性玻璃体视网膜病变中的作用 | 第41-43页 |
| ·RPE在增生性玻璃体视网膜病变中的作用 | 第41页 |
| ·TGF-β在增生性玻璃体视网膜病变中的作用 | 第41-42页 |
| ·增生性玻璃体视网膜病变的主要发病机制 | 第42-43页 |
| ·祖国医学对增生性玻璃体视网膜病变的认识 | 第43-44页 |
| ·海昆化瘀片的研制背景 | 第44-46页 |
| ·海昆化瘀片防治PVR的作用与机理 | 第46-50页 |
| ·减轻PVR动物模型眼底增生程度 | 第46-47页 |
| ·抑制PVR动物模型增生膜形成及增生膜内细胞增生 | 第47-48页 |
| ·抑制PVR动物模型PCNA的表达水平 | 第48页 |
| ·抑制PVR动物模型TGF-β表达水平 | 第48-49页 |
| ·抑制PVR动物模型bFGF表达水平 | 第49-50页 |
| 5 结论 | 第50-51页 |
| 6 问题与展望 | 第51-52页 |
| 7 致谢 | 第52-53页 |
| 8 参考文献 | 第53-59页 |
| 9 综述 | 第59-67页 |
| 参考文献 | 第64-67页 |
| 附图1 原代RPE细胞生长情况 | 第67-68页 |
| 附图2 传代的RPE细胞生长情况 | 第68-69页 |
| 附图3 RPE细胞免疫组化染色图片 | 第69-70页 |
| 附图4 眼底照相图片 | 第70-71页 |
| 附图5 HE染色图片 | 第71-72页 |
| 附图6 免疫组化染色 | 第72-73页 |
| 附件1 在校期间公开发表的学术论文 | 第73-74页 |
