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植物亚精胺合成酶基因(MdSPDS)导入马铃薯的研究

摘要第1-6页
Abstract第6-12页
第一章 前言第12-26页
 1 多胺的概述第12-19页
   ·植物多胺的代谢途径第12-14页
   ·植物多胺的生理作用第14-15页
   ·植物多胺的作用机制第15-19页
 2 多胺合成酶基因在提高植物非生物胁迫抗性上的应用第19-21页
   ·ADC的应用第19-20页
   ·ODC的应用第20页
   ·SPDS的应用第20页
   ·SAMDC的应用第20-21页
 3 基因工程在马铃薯育种中的应用第21-25页
   ·在提高马铃薯品质上的应用第21-22页
   ·在提高马铃薯生物胁迫抗性上的应用第22-23页
   ·在提高马铃薯非生物胁迫抗性上的应用第23-25页
 4 本研究的目的及意义第25-26页
第二章 马铃薯基因转化再生体系的建立及亚精胺合成酶基因(MdSPDS)的导入第26-42页
 1 试验材料第26-27页
   ·植物材料第26页
   ·菌株与载体第26页
   ·主要试剂第26页
   ·培养基第26-27页
   ·实验仪器第27页
 2 试验方法第27-31页
   ·扩大繁殖转化受体材料第27页
   ·农杆菌感受态细胞的制备第27-28页
   ·目的基因冻融法转化农杆菌第28页
   ·转化农杆菌的PCR鉴定第28-30页
   ·抑制农杆菌生长抗生素浓度的筛选第30页
   ·抗生素选择压的筛选第30页
   ·转化工程菌液的制备第30-31页
   ·马铃薯遗传转化和植株再生第31页
 3 结果与分析第31-37页
   ·单菌落及表达载体质粒PCR鉴定第31-32页
   ·抑制农杆菌生长抗生素浓度的确定第32页
   ·抗生素选择压的确定第32-36页
   ·马铃薯遗传转化和植株的再生第36-37页
 4 讨论第37-42页
   ·影响马铃薯再生体系建立的因素第37-39页
   ·农杆菌活力对转化的影响第39页
   ·抗生素对转化的影响第39-40页
   ·选择培养对转化的影响第40页
   ·预培养对转化的影响第40页
   ·农杆菌侵染时间对转化的影响第40-41页
   ·共培养对转化的影响第41-42页
第三章 马铃薯转化植株MdSPDS表达情况的检测第42-52页
 1 实验材料第42页
   ·植物材料第42页
   ·主要试剂第42页
   ·实验仪器第42页
 2 实验方法第42-46页
   ·马铃薯MdSPDS转化植株的PCR的检测第42-43页
   ·马铃薯MdSPDS转化植株基因表达情况的检测第43-45页
   ·马铃薯转化植株试管薯苗MdSPDS表达“稳定性”检测第45页
   ·多胺含量的检测第45-46页
 3 结果与分析第46-50页
   ·马铃薯MdSPDS转化株的PCR检测第46页
   ·马铃薯MdSPDS转化植株基因表达情况的检测第46-47页
   ·马铃薯MdSPDS转化株基因表达稳定性的检测第47-49页
   ·马铃薯MdSPDS转化植株多胺HPLC定量检测第49-50页
 4 讨论第50-52页
第四章 马铃薯MdSPDS转化植株生育性状的初步观察和低温逆境抗性的初步鉴定第52-64页
 1 实验材料第52页
 2 试验方法第52-53页
   ·试管苗形态性状的观察与测定第52页
   ·试管苗结试管薯情况第52页
   ·试管苗盆栽结薯情况第52页
   ·试管薯盆栽实生苗结薯情况第52-53页
   ·马铃薯MdSPDS转化植株低温弱光逆境胁迫反应的初步观察第53页
 3 结果与分析第53-62页
   ·试管苗形态性状的观察与测定第53-57页
   ·试管苗结试管薯情况第57-58页
   ·试管苗盆栽结薯情况第58页
   ·试管薯盆栽实生苗结薯情况第58页
   ·马铃薯MdSPDS转化植株低温逆境抗性的初步鉴定第58-62页
 4 讨论第62-64页
第五章 结论与下一步研究设想第64-66页
 1 结论第64页
 2 下一步研究设想第64-66页
参考文献第66-74页
附录 缩略词第74-77页
致谢第77-78页
作者简介第78页

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