摘要 | 第1-7页 |
ABSTRACT | 第7-13页 |
目录 | 第13-18页 |
1 绪论 | 第18-22页 |
2 股动脉结扎诱导的侧支血管生长、VE-cadherin表达和通透性变化 | 第22-37页 |
·材料与方法 | 第23-28页 |
·试剂及设备 | 第23-24页 |
·实验动物分组及动物模型 | 第24页 |
·取材、保存与切片 | 第24-25页 |
·血管造影 | 第25页 |
·H.E.染色 | 第25-26页 |
·VE-cadherin、Ki67的免疫荧光组织化学染色 | 第26-27页 |
·血管通透性实验 | 第27页 |
·结果观察 | 第27-28页 |
·数据分析 | 第28页 |
·实验结果 | 第28-34页 |
·血管造影结果 | 第28页 |
·H.E.染色结果 | 第28-29页 |
·股动脉结扎后诱导的侧支血管的增殖情况 | 第29页 |
·股动脉结扎后诱导的侧支血管VE-cadherin表达的变化 | 第29页 |
·股动脉结扎后诱导的侧支血管通透性的变化 | 第29-34页 |
·讨论 | 第34-37页 |
·股动脉结扎诱导的侧支血管生长 | 第34页 |
·股动脉结扎诱导的侧支血管生长过程中VE-cadherin表达和通透性变化 | 第34-37页 |
3 NO/NOS对侧支血管生长过程中VE-cadherin表达和通透性的影响 | 第37-53页 |
·材料与方法 | 第38-41页 |
·试剂及设备 | 第38-39页 |
·实验动物分组及动物模型 | 第39页 |
·血管通透性实验 | 第39页 |
·取材与切片 | 第39-40页 |
·VE-cadherin、eNOS、iNOS、Ki67、CD11b、CD31的免疫荧光组织化学染色 | 第40页 |
·结果观察 | 第40-41页 |
·数据分析 | 第41页 |
·实验结果 | 第41-49页 |
·NO供体和NOS抑制剂对侧支血管增殖的影响 | 第41页 |
·NO供体和NOS抑制剂对侧支血管炎症的影响 | 第41页 |
·NOS抑制剂对侧支血管eNOS、iNOS的影响 | 第41-42页 |
·NO供体和NOS抑制剂对侧支血管VE-cadherin的影响 | 第42页 |
·NO供体和NOS抑制剂对血管通透性的影响 | 第42-43页 |
附图 | 第43-49页 |
·讨论 | 第49-53页 |
·NOS在股动脉结扎诱导的侧支血管中的表达 | 第49页 |
·NO/NOS对侧支血管VE-cadherin表达、通透性的影响 | 第49-50页 |
·NO/NOS—VE-cadherin—通透性通路在侧支血管生长过程中对单核细胞/巨噬细胞的浸润的影响 | 第50-53页 |
4 NO/NOS对体外培养血管内皮细胞VE-cadherin的表达、细胞增殖和通透性的影响 | 第53-79页 |
·材料与方法 | 第54-64页 |
·实验试剂、材料和设备 | 第54-56页 |
·细胞传代培养及鉴定 | 第56-57页 |
·实验分组及处理 | 第57页 |
·NO产物浓度的测定 | 第57-58页 |
·体外HUVEC细胞通透性实验 | 第58-59页 |
·MTT比色法检测内皮细胞活性的影响 | 第59-60页 |
·HUVEC细胞CD31、VE-cadherin、eNOS、和Ki67的免疫荧光细胞化学染色 | 第60-61页 |
·Western Blot检测HUVEC细胞VE-cadherin、eNOS的表达 | 第61-63页 |
·数据收集 | 第63-64页 |
·统计学分析 | 第64页 |
·实验结果 | 第64-76页 |
·传代的HUVEC细胞形态和鉴定结果 | 第64页 |
·NO产物检测结果 | 第64页 |
·DETA NONOate和L-NAME对HUVEC细胞通透性的影响 | 第64-65页 |
·MTT比色法检测HUVEC细胞的活性结果 | 第65页 |
·DETA NONOate和L-NAME对HUVEC细胞Ki67表达的影响 | 第65页 |
·L-NAME抑制HUVEC细胞eNOS表达 | 第65-66页 |
·DETA NONOate、L-NAME对HUVEC细胞VE-cadherin表达的影响 | 第66-67页 |
附图 | 第67-76页 |
·讨论 | 第76-79页 |
·NO/NOS对血管内皮细胞VE-cadherin表达的影响 | 第76-77页 |
·NO/NOS对血管内皮细胞增殖的影响 | 第77-79页 |
5 结论 | 第79-80页 |
参考文献 | 第80-88页 |
综述 | 第88-113页 |
参考文献 | 第101-113页 |
攻读学位期间主要的研究成果目录 | 第113-115页 |
致谢 | 第115页 |