| 摘要 | 第1-8页 |
| ABSTRACT | 第8-14页 |
| 文献综述 | 第14-29页 |
| 第一章 新城疫病毒的生物学特性研究进展 | 第14-29页 |
| ·新城疫病毒 | 第14页 |
| ·新城疫病毒的基因分型 | 第14-16页 |
| ·新城疫病毒的全基因分型 | 第14-15页 |
| ·新城疫病毒的 F 基因分型 | 第15-16页 |
| ·新城疫病毒与受体的结合 | 第16-19页 |
| ·新城疫病毒的细胞受体 | 第17页 |
| ·HN 蛋白与受体的结合 | 第17-19页 |
| ·新城疫病毒与细胞融合 | 第19-21页 |
| ·F 蛋白的促细胞融合功能 | 第19-20页 |
| ·HN 蛋白在病毒与细胞融合中的作用 | 第20-21页 |
| ·新城疫病毒的复制 | 第21-24页 |
| ·NP 蛋白的功能 | 第21-22页 |
| ·P 蛋白的功能 | 第22-23页 |
| ·L 蛋白的功能 | 第23-24页 |
| ·新城疫病毒的组装与出芽 | 第24-26页 |
| ·M 蛋白的功能 | 第24页 |
| ·病毒的组装 | 第24-25页 |
| ·病毒的出芽 | 第25-26页 |
| ·新城疫病毒的致病力 | 第26-27页 |
| ·不同毒力 NDV 分离株的特点 | 第26-27页 |
| ·影响 NDV 毒力的因素 | 第27页 |
| ·新城疫病毒的反向遗传 | 第27-29页 |
| ·NDV 反向遗传系统的构建 | 第27-28页 |
| ·NDV 反向遗传系统的应用 | 第28-29页 |
| 试验研究 | 第29-63页 |
| 第二章 两株新城疫病毒的致病性研究 | 第29-38页 |
| ·材料 | 第29-30页 |
| ·毒株 | 第29页 |
| ·SPF 鸡胚 | 第29页 |
| ·1 日龄雏鸡 | 第29-30页 |
| ·细胞 | 第30页 |
| ·试剂 | 第30页 |
| ·培养基及试剂的配置 | 第30页 |
| ·主要仪器 | 第30页 |
| ·方法 | 第30-32页 |
| ·无菌病毒尿囊液的制备 | 第30页 |
| ·ICPI | 第30-31页 |
| ·蚀斑计数法测定病毒的滴度 | 第31页 |
| ·病毒在 DF-1 细胞上的增殖规律 | 第31-32页 |
| ·病毒在 DF-1 细胞上形成的合胞体 | 第32页 |
| ·结果 | 第32-35页 |
| ·ICPI 的测定结果 | 第32-33页 |
| ·病毒的滴度 | 第33页 |
| ·病毒在 DF-1 细胞上形成的合胞体 | 第33-35页 |
| ·病毒在 DF-1 细胞上的增殖能力 | 第35页 |
| ·讨论 | 第35-37页 |
| ·小结 | 第37-38页 |
| 第三章 两株新城疫病毒全基因序列的测定 | 第38-53页 |
| ·材料 | 第38-40页 |
| ·SPF 鸡胚 | 第38页 |
| ·菌株及载体 | 第38页 |
| ·试剂 | 第38页 |
| ·NDV 参考毒株 | 第38页 |
| ·扩增全基因的引物 | 第38-39页 |
| ·培养基及常用试剂的配制 | 第39-40页 |
| ·主要仪器 | 第40页 |
| ·方法 | 第40-43页 |
| ·病毒的增殖 | 第40页 |
| ·两株病毒 RNA 的提取 | 第40页 |
| ·两株 NDV 的 RT-PCR 反应 | 第40-41页 |
| ·PCR 产物的纯化 | 第41页 |
| ·纯化 PCR 产物的连接 | 第41页 |
| ·连接产物的转化 | 第41-42页 |
| ·重组质粒 pMD19-T-NDV Fragment 的提取 | 第42页 |
| ·质粒的酶切鉴定 | 第42页 |
| ·NDV 片段的测序及分析 | 第42-43页 |
| ·结果 | 第43-50页 |
| ·两株 NDV 全基因片段的 PCR 扩增 | 第43页 |
| ·阳性克隆的鉴定 | 第43-44页 |
| ·两株 NDV 的全基因序列的特征 | 第44-45页 |
| ·两株 NDV 的分子特征与其它 NDV 毒株的比较 | 第45-50页 |
| ·讨论 | 第50-51页 |
| ·小结 | 第51-53页 |
| 第四章 野鸟源 SpottedDove/China/08 分离株全长 cDNA 的构建 | 第53-63页 |
| ·材料 | 第53-55页 |
| ·SPF 鸡胚 | 第53页 |
| ·菌株及载体 | 第53页 |
| ·主要试剂 | 第53页 |
| ·构建全长 cDNA 所需的引物 | 第53-54页 |
| ·培养基及常用试剂的配制 | 第54页 |
| ·主要仪器 | 第54-55页 |
| ·方法 | 第55-58页 |
| ·构建全长 cDNA 的策略 | 第55页 |
| ·新鲜病毒尿囊液的扩增 | 第55页 |
| ·病毒 RNA 的提取 | 第55页 |
| ·RT-PCR 反应 | 第55-56页 |
| ·SpottedDove/China/08 分离株全长 cDNA 的构建 | 第56-58页 |
| ·SpottedDove/China/08 片段的克隆及序列测定 | 第58页 |
| ·结果 | 第58-60页 |
| ·SpottedDove/China/08 全基因组 6 个子片段的扩增 | 第58页 |
| ·NDV 12 及 NDV 56 片段的融合 PCR 扩增 | 第58-59页 |
| ·NDV 123 及 NDV 456 片段的融合 PCR 扩增 | 第59-60页 |
| ·SpottedDove/China/08 全长 cDNA 片段的融合 PCR 扩增 | 第60页 |
| ·融合 PCR 产物的序列测定 | 第60页 |
| ·讨论 | 第60-62页 |
| ·小结 | 第62-63页 |
| 结论 | 第63-64页 |
| 参考文献 | 第64-76页 |
| 附录 | 第76-78页 |
| 缩略词 | 第78-79页 |
| 致谢 | 第79-80页 |
| 作者简介 | 第80页 |
