中文摘要 | 第1-7页 |
Abstract | 第7-16页 |
第一章 绪论 | 第16-39页 |
·毛细管电泳概述 | 第16页 |
·毛细管电泳装置及其特点 | 第16-17页 |
·毛细管电泳的基本理论 | 第17-19页 |
·毛细管电泳的分离原理 | 第17-18页 |
·毛细管电泳的分离效率与分离度 | 第18-19页 |
·毛细管电泳的常见分离模式 | 第19-21页 |
·胶束毛细管电泳和微乳毛细管电泳 | 第21-28页 |
·胶束毛细管电泳(MEKC) | 第21-25页 |
·MEKC 简介 | 第21页 |
·MEKC 原理 | 第21-22页 |
·MEKC 的应用 | 第22-25页 |
·MEKC 的展望 | 第25页 |
·微乳毛细管电泳(MEEKC) | 第25-28页 |
·MEEKC 简介 | 第26页 |
·MEEKC 原理 | 第26页 |
·MEEKC 的应用与发展 | 第26-28页 |
·MEEKC 的优缺点 | 第28页 |
·毛细管电泳高效分离分析 | 第28-33页 |
·影响毛细管电泳分离的主要操作因素 | 第28-30页 |
·毛细管电泳的柱技术 | 第30-32页 |
·MEKC 与 MEEKC 分离影响因素 | 第32-33页 |
·毛细管电泳检测器 | 第33-37页 |
·本论文的立题依据与研究内容 | 第37-39页 |
第二章 本论文的研究目的和步骤 | 第39-41页 |
·研究目的 | 第39页 |
·步骤 | 第39-41页 |
第三章 β-CD 修饰的胶束毛细管电泳快速分离亲脂性药物异构体 | 第41-52页 |
·引言 | 第41-42页 |
·材料和方法 | 第42-43页 |
·仪器 | 第42页 |
·试剂与材料 | 第42页 |
·样品准备 | 第42-43页 |
·分离和测定的程序 | 第43页 |
·结果和讨论 | 第43-50页 |
·检测电压的优化 | 第43-44页 |
·运行缓冲液的组成优化 | 第44-49页 |
·缓冲液修饰剂的优化结果 | 第44-47页 |
·缓冲体系 pH 值和浓度对分离效率的影响 | 第47-49页 |
·分离电压和进样时间的影响 | 第49页 |
·异构体分离和检测的线性范围,检测限和重现性 | 第49-50页 |
·样品合成中间体的分析 | 第50-51页 |
·小结 | 第51-52页 |
第四章 SDS 微乳体系中 pH 值对其电渗流行为与微结构的影响 | 第52-59页 |
·引言 | 第52页 |
·实验部分 | 第52-53页 |
·仪器与试剂 | 第52-53页 |
·拟三元相图制作 | 第53页 |
·样品溶液的制备 | 第53页 |
·微乳液滴粒径和ζ电位测定 | 第53页 |
·样品溶液微乳体系电导率的测定 | 第53页 |
·结果与讨论 | 第53-58页 |
·拟三相图中 O/W 微乳液区域的确定 | 第53-54页 |
·pH 值对微乳体系电渗流行为的影响 | 第54-56页 |
·pH 值对微乳体系微结构和表面活性的影响 | 第56-58页 |
·pH值对微乳粒径和微乳ζ电位的影响 | 第56-57页 |
·pH对微乳体系电导率的影响 | 第57-58页 |
·小结 | 第58-59页 |
第五章 微乳毛细管电泳分离舍曲林异构体 | 第59-70页 |
·引言 | 第59-60页 |
·实验仪器与试剂 | 第60-61页 |
·自组装分子膜准备 | 第61页 |
·结果与讨论 | 第61-68页 |
·自组装分子膜的优化 | 第61页 |
·微乳体系优化 | 第61-64页 |
·运行缓冲液和电泳条件优化 | 第64-66页 |
·分析方法稳定性测定 | 第66页 |
·样品测定和回收率 | 第66-68页 |
·分离机理讨论 | 第68-69页 |
·小结 | 第69-70页 |
第六章 舍曲林在芦丁修饰电极上的电化学行为及其氧化机理研究 | 第70-81页 |
·引言 | 第70-71页 |
·实验 | 第71-72页 |
·实验试剂与材料 | 第71页 |
·实验仪器 | 第71页 |
·修饰电极的准备 | 第71页 |
·样品的前处理 | 第71-72页 |
·结果与讨论 | 第72-80页 |
·玻碳电极的修饰机理 | 第72-74页 |
·芦丁修饰电极的电化学行为 | 第74-76页 |
·舍曲林在修饰电极上的催化氧化 | 第76-79页 |
·修饰电极上用 DPV 法测定舍曲林 | 第79页 |
·修饰电极的干扰研究 | 第79-80页 |
·小结 | 第80-81页 |
第七章 毛细管电泳研究细菌在溶解酶催化条件的水解常数 | 第81-92页 |
7.1引言 | 第81-82页 |
·原料和方法 | 第82-83页 |
·实验原料 | 第82页 |
·实验仪器 | 第82-83页 |
·培养基和菌体的准备 | 第83页 |
·实验过程 | 第83页 |
·结果和讨论 | 第83-91页 |
·细菌分离优化 | 第83-88页 |
·PEO 和β-CD 修饰剂的浓度优化 | 第83-85页 |
·缓冲液的 pH 值和浓度对分离度的影响 | 第85-87页 |
·进样时间和分离电压的影响 | 第87-88页 |
·菌体的水解 | 第88-91页 |
·三种菌体革兰氏菌种的筛选 | 第88-90页 |
·BS 和 SAR菌体水解速率常数的测定 | 第90-91页 |
·小结 | 第91-92页 |
第八章 高效液相色谱测定自由基和黄酮抗氧化活性的比较 | 第92-100页 |
·引言 | 第92-93页 |
·实验 | 第93-94页 |
·实验仪器和试剂 | 第93页 |
·羟基自由基的产生及与探针和抗氧化物质的反应 | 第93页 |
·分离和测定 | 第93-94页 |
·结果和讨论 | 第94-98页 |
·羟基自由基产生条件的优化 | 第94-96页 |
·抗氧化能力的测定 | 第96-97页 |
·抗氧化速率常数的测定 | 第97页 |
·黄酮抗氧化能力构效关系的研究 | 第97-98页 |
·小结 | 第98-100页 |
参考文献 | 第100-114页 |
攻读博士期间本人公开发表的论文、论著 | 第114-115页 |
致谢 | 第115-116页 |