摘要 | 第1-7页 |
Abstract | 第7-13页 |
中英文对照表 | 第13-14页 |
第一章 文献综述 | 第14-32页 |
1 国内外研究现状 | 第15-29页 |
·多酚氧化酶的命名及其分类 | 第15页 |
·多酚氧化酶的分布及其组织定位 | 第15-17页 |
·多酚氧化酶生理生化功能 | 第17-19页 |
·多酚氧化酶的理化性质 | 第19-20页 |
·多酚氧化酶的分子生物学研究 | 第20-24页 |
·多酚氧化酶酶多基因家族 | 第20-21页 |
·多酚氧化酶基因的克隆 | 第21-22页 |
·多酚氧化酶分子结构及其同工酶 | 第22-23页 |
·多酚氧化酶基因的诱导和表达 | 第23-24页 |
·小麦多酚氧化酶的分子生物学研究 | 第24页 |
·多酚氧化酶的提取及活性的测定 | 第24-25页 |
·影响多酚氧化酶活性的因素 | 第25-26页 |
·多酚氧化酶活性与产品品质 | 第26-28页 |
·小麦籽粒多酚氧化酶活性的改良途径 | 第28-29页 |
2 立论依据和研究方案 | 第29-32页 |
·立论依据 | 第29-30页 |
·研究方案 | 第30-32页 |
·研究目标 | 第30页 |
·研究内容 | 第30-32页 |
第二章 小麦2D染色体上多酚氧化酶基因STS分子标记的开发与应用 | 第32-43页 |
1 材料与方法 | 第33-35页 |
·试验材料 | 第33页 |
·试验方法 | 第33-35页 |
2 结果与分析 | 第35-40页 |
·130份小麦品种PPO活性的变异 | 第35页 |
·STS01的多态性检测 | 第35-36页 |
·STS01的染色体定位 | 第36-37页 |
·STS01的有效性验证 | 第37-38页 |
·STS01在筛选低PPO活性种质资源中的应用 | 第38-40页 |
3 讨论 | 第40-42页 |
4 结论 | 第42-43页 |
第三章 小麦PPO基因的分类及非同义cSNP对籽粒PPO活性的影响 | 第43-53页 |
1 材料与方法 | 第43-45页 |
·试验材料 | 第43-44页 |
·试验方法 | 第44-45页 |
2 结果与分析 | 第45-50页 |
·小麦PPO基因及其分类 | 第45-46页 |
·小麦PPO等位基因的非同义cSNP | 第46-47页 |
·非同义cSNP对籽粒PPO活性的影响 | 第47-49页 |
·STS-H和STS01的关系及多重PCR反应体系 | 第49-50页 |
3 讨论 | 第50-53页 |
第四章 用STS标记检测中国小麦微核心种质资源PPO基因的等位变异 | 第53-62页 |
1 材料和方法 | 第53-54页 |
·试验材料 | 第53页 |
·试验方法 | 第53-54页 |
·数据分析 | 第54页 |
2 结果与分析 | 第54-60页 |
·中国小麦微核心种质资源PPO活性的变异 | 第54-55页 |
·PPO基因等位变异及其与PPO活性的关系 | 第55-57页 |
·PPO基因等位变异的检测 | 第55-56页 |
·四种基因型小麦品种PPO活性的差异 | 第56-57页 |
·不同来源小麦品种的PPO等位基因类型及PPO活性的差异 | 第57-59页 |
·主要骨干亲本PPO活性及其基因等位变异类型 | 第59-60页 |
3 讨论 | 第60-62页 |
第五章 小麦不同染色体上PPO基因的同源扩增 | 第62-69页 |
1 材料与方法 | 第62-63页 |
·试验材料 | 第62页 |
·试验方法 | 第62-63页 |
2 结果与分析 | 第63-66页 |
·PPO05的PCR扩增结果 | 第63-65页 |
·PPO05 PCR扩增片段的序列分析 | 第65-66页 |
3 讨论 | 第66-69页 |
第六章 结论 | 第69-71页 |
参考文献 | 第71-83页 |
附录 | 第83-98页 |
致谢 | 第98-99页 |
个人简历 | 第99-100页 |
相关研究成果 | 第100页 |