摘要 | 第1-5页 |
Abstract | 第5-12页 |
第一章 文献综述 | 第12-28页 |
1. CAVEOLIN-1 的蛋白质结构和基因定位 | 第13-14页 |
·CAVEOLIN-1 的蛋白质结构 | 第13页 |
·CAVEOLIN-1 的基因定位 | 第13-14页 |
2. CAVEOLIN-1 与乳腺的发育 | 第14-15页 |
3. CAVEOLIN-1 与乳腺细胞转化、乳腺癌发生和发展 | 第15-16页 |
4. CAVEOLIN-1 抑制乳腺癌细胞生长的可能机制 | 第16-21页 |
·通过抑制细胞周期蛋白的表达负调节细胞增殖 | 第17-18页 |
·与 P13K 相互作用诱导细胞凋亡 | 第18页 |
·下调 RAS-MAPK 通路抑制细胞增殖 | 第18-19页 |
·与雌激素受体相互作用抑制乳腺细胞转化 | 第19-21页 |
5. 展望 | 第21-22页 |
参考文献(References) | 第22-28页 |
第二章 CAVEOLIN-1 单倍不足对人乳腺上皮细胞 MCF10A 周期调控的影响 | 第28-51页 |
前言 | 第28-29页 |
1 材料和方法 | 第29-38页 |
·材料与仪器 | 第29页 |
·材料与试剂 | 第29页 |
·主要仪器 | 第29页 |
·方法 | 第29-38页 |
·细胞培养 | 第29-30页 |
·主要试剂配置 | 第29-30页 |
·细胞培养条件 | 第30页 |
·流式细胞仪分析细胞周期变化 | 第30-31页 |
·蛋白样品制备与定量 | 第31-32页 |
·主要试剂配置 | 第31页 |
·蛋白提取 | 第31页 |
·蛋白定量 | 第31-32页 |
·SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE) | 第32-34页 |
·主要试剂配制 | 第32-33页 |
·胶的制备 | 第33页 |
·样品的制备 | 第33页 |
·电泳 | 第33-34页 |
·蛋白质免疫印迹(Western Blot)测定细胞周期相关蛋白的表达 | 第34-36页 |
·主要试剂配置 | 第34页 |
·免疫印迹 | 第34-36页 |
·统计分析 | 第36页 |
·RT-PCR 半定量检测相关基因m RNA 的变化 | 第36-38页 |
·总 RNA 的提取 | 第36-37页 |
·总 RNA 模板的纯化 | 第37页 |
·RNA 分子量和浓度的测定 | 第37页 |
·RT- PCR 法半定量检测目的基因m RNA 水平 | 第37-38页 |
2. 结果 | 第38-45页 |
·CAVEOLIN-1 在不同细胞株中的表达水平 | 第38页 |
·CAVEOLIN-1 单倍不足对细胞周期时相的影响 | 第38-41页 |
·CAVEOLIN-1 单倍不足对细胞周期蛋白 CYCLIND1MRNA 和蛋白水平的影响 | 第41-43页 |
·CAVEOLIN-1 单倍不足对 P16 蛋白水平的影响 | 第43-44页 |
·CAVEOLIN-1 单倍不足对 P21 蛋白水平的影响 | 第44-45页 |
3 讨论 | 第45-48页 |
4 小结 | 第48-49页 |
参考文献(References) | 第49-51页 |
第三章 CAVEOLIN-1 单倍不足对几种转录因子表达的影响 | 第51-63页 |
前言 | 第51-52页 |
1 材料和方法 | 第52-53页 |
·材料与仪器 | 第52页 |
·材料与试剂 | 第52页 |
·主要仪器(同第二部分,略) | 第52页 |
·方法 | 第52-53页 |
·细胞培养 | 第52-53页 |
·主要试剂配置(同第二部分,略) | 第52页 |
·细胞培养条件(同第二部分,略) | 第52页 |
·细胞处理方法 | 第52-53页 |
·蛋白样品制备与定量(同第二部分,略) | 第53页 |
2. 结果 | 第53-57页 |
·CAVEOLIN-1 单倍不足对几种转录因子表达的影响 | 第53页 |
·CAVEOLIN-1 单倍不足对 ER-Α表达的影响 | 第53页 |
·CAVEOLIN-1 单倍不足对细胞存活通路 AKT 活性的影响 | 第53-57页 |
3. 讨论 | 第57-59页 |
4 小结 | 第59-61页 |
参考文献(References) | 第61-63页 |
结论 | 第63-64页 |
附录 | 第64-65页 |
致谢 | 第65-66页 |
作者简介 | 第66页 |
发表的主要论文 | 第66-67页 |