摘要 | 第1-7页 |
Abstract | 第7-9页 |
一.前言 | 第9-26页 |
1.文献综述: | 第9-23页 |
·骨的发生 | 第9-10页 |
·成骨细胞分化过程中主要转录因子的研究及进展 | 第10-16页 |
·Osterix调控机制的研究和进展 | 第16-18页 |
·Real-Time Quantitative PCR概述 | 第18-21页 |
·双荧光素酶报告基因测试系统(DLR)概述 | 第21-23页 |
2.本论文的研究内容及意义 | 第23-25页 |
·研究内容 | 第23-24页 |
·研究意义 | 第24-25页 |
3.研究思路 | 第25-26页 |
·Real-Time Q-PCR检测Osterix基因是否在RNA水平上受到调控 | 第25页 |
·BMP-2相关的Osterix启动子核心区域探寻 | 第25-26页 |
二.实验仪器与材料 | 第26-31页 |
1.主要仪器 | 第26-27页 |
2.材料 | 第27-31页 |
·细胞株及质粒 | 第27页 |
·工具酶和试剂盒 | 第27-28页 |
·常用试剂及配方 | 第28-31页 |
三.实验方法 | 第31-47页 |
1.BMP-2诱导C2C12,C3H10T1/2和MC3T3-E1,并检测Osterix的表达 | 第31-36页 |
·细胞的BMP-2诱导 | 第31页 |
·细胞总RNA的抽提 | 第31-32页 |
·用DNase Ⅰ(RNase free)处理RNA | 第32页 |
·总RNA纯度和完整性检测 | 第32-33页 |
·逆转录 | 第33页 |
·常规PCR检测逆转录是否成功 | 第33-34页 |
·Real-Time Q-PCR检测Osterix表达水平 | 第34-36页 |
2、Osterix启动子缺失突变的Luciferase报告载体构建 | 第36-44页 |
·实验设计 | 第36-38页 |
·BAC的制备 | 第38页 |
·PCR扩增 | 第38-40页 |
·切胶回收纯化PCR或酶切产物 | 第40-41页 |
·酶切反应 | 第41页 |
·连接反应 | 第41-42页 |
·点击转化宿主大肠杆菌 | 第42页 |
·重组子的快速鉴定 | 第42-43页 |
·质粒抽提 | 第43页 |
·双酶切鉴定 | 第43-44页 |
3.BMP-2相关的Osterix核心启动元件的探寻 | 第44-47页 |
·实验设计 | 第44页 |
·转染用质粒制备 | 第44-45页 |
·质粒转染C2C12,C3H10T1/2和MC3T3-E1细胞 | 第45页 |
·BMP-2诱导转染后的细胞 | 第45页 |
·Dual-Luciferase Reporter Assay System检测Luciferase活性 | 第45-47页 |
四.结果与分析 | 第47-58页 |
1.BMP-2分别诱导C2C12,C3H10T1/2和MC3T3-E1,并检测Osterix的表达 | 第47-50页 |
·细胞总RNA的纯度和完整性检测 | 第47页 |
·常规PCR检测逆转录 | 第47-48页 |
·Real-Time Q-PCR检测不同样本的Osterix表达水平 | 第48-49页 |
·小结 | 第49-50页 |
2.Osterix启动子区域生物信息学分析 | 第50-52页 |
·不同种属Osterix启动子区域高度保守区探寻 | 第50页 |
·Osterix启动子区域转录因子结合位点预测 | 第50-52页 |
3.Osterix启动子缺失突变的Luciferase报告载体构建 | 第52-54页 |
·PCR扩增 | 第52-53页 |
·载体鉴定 | 第53-54页 |
4.BMP-2相关的Osterix核心启动元件的探寻 | 第54-57页 |
小结 | 第57-58页 |
五.讨论 | 第58-62页 |
1.细胞株的选择策略 | 第58页 |
2.启动子区域的预测 | 第58-60页 |
3.启动子核心区域探寻及结果分析 | 第60-62页 |
六.总结与展望 | 第62-64页 |
1.总结 | 第62页 |
2.展望 | 第62-64页 |
七.参考文献 | 第64-67页 |
八.附录 | 第67-69页 |
1.pGL3-NBOP1.3K克隆测序结果图谱 | 第67-68页 |
2.pGL3-NBOP1.3K全序列 | 第68-69页 |
九.致谢 | 第69页 |