| 摘要 | 第1-9页 |
| ABSTRACT | 第9-17页 |
| 前言 | 第17-19页 |
| 第一部分 人胚胎肝细胞的分离、纯化、鉴定和培养体系的建立 | 第19-45页 |
| 第一章 引言 | 第19页 |
| 第二章 材料和方法 | 第19-27页 |
| ·主要试剂及仪器 | 第19-20页 |
| ·主要试剂配制 | 第20-25页 |
| ·人原代胚胎肝细胞的分离 | 第25页 |
| ·人原代胚胎肝细胞的纯化 | 第25-26页 |
| ·人原代胚胎肝细胞的培养 | 第26页 |
| ·人原代胚胎肝细胞的鉴定 | 第26-27页 |
| 第三章 结果 | 第27-37页 |
| ·人原代胚胎肝细胞的分离 | 第27页 |
| ·人原代胚胎肝细胞的纯化 | 第27-29页 |
| ·人原代胚胎肝细胞的培养 | 第29-30页 |
| ·人原代胚胎肝细胞的鉴定 | 第30-37页 |
| 第四章 讨论 | 第37-41页 |
| 第五章 结论 | 第41页 |
| 第六章 参考文献 | 第41-45页 |
| 第二部分 AGEs修饰蛋白对人胚胎肝细胞合成CRP的影响及作用机制 | 第45-90页 |
| 第一章 材料和方法 | 第45-59页 |
| ·主要试剂及仪器 | 第45-46页 |
| ·主要试剂配制 | 第46-47页 |
| ·无内毒素AGEs修饰蛋白的制备和鉴定 | 第47-48页 |
| ·人胚胎肝细胞的分离、纯化和培养 | 第48页 |
| ·ELISA法检测不同处理因素的人胚胎肝细胞培养上清中CRP浓度 | 第48-54页 |
| ·ELISA法检测AGEs-HSA作用的人胚胎肝细胞培养上清中CRP浓度 | 第48-49页 |
| ·ELISA法检测单核细胞条件上清作用的人胚胎肝细胞上清中CRP浓度 | 第49-51页 |
| ·细胞因子中和性抗体及其可溶性受体对单核细胞条件上清诱导人胚胎肝细胞产生CRP的影响 | 第51-53页 |
| ·单核细胞条件上清与外源性细胞因子对人胚胎肝细胞CRP诱导作用的比较 | 第53-54页 |
| ·实时荧光定量RT-PCR-SYBR~(?) Green Ⅰ嵌合荧光法检测单核细胞条件上清诱导的人胚胎肝细胞内CRP mRNA表达水平 | 第54-58页 |
| ·人胚胎肝细胞的培养 | 第54页 |
| ·人胚胎肝细胞的处理 | 第54页 |
| ·人胚胎肝细胞总RNA的提取 | 第54-55页 |
| ·应用实时荧光定量RT-PCR—SYBR~(?) Green Ⅰ嵌合荧光法检测单核细胞条件上清诱导的人胚胎肝细胞内CRP mRNA水平 | 第55-58页 |
| ·统计学处理 | 第58-59页 |
| 第二章 结果 | 第59-77页 |
| ·无内毒素AGEs修饰蛋白的鉴定 | 第59页 |
| ·ELISA法检测AGEs-HSA对人胚胎肝细胞产生CRP的直接诱导作用 | 第59-60页 |
| ·ELISA法检测单核细胞条件上清对人胚胎肝细胞CRP的诱导作用 | 第60-68页 |
| ·单核细胞条件上清对人胚胎肝细胞CRP诱导作用的时间效应 | 第60-62页 |
| ·单核细胞条件上清对人胚胎肝细胞CRP诱导作用的剂量效应 | 第62-64页 |
| ·细胞因子中和性抗体及其可溶性受体对单核细胞条件上清诱导人胚胎肝细胞产生CRP的抑制作用 | 第64-68页 |
| ·单核细胞条件上清与外源性细胞因子对人胚胎肝细胞CRP诱导作用的比较 | 第68-73页 |
| ·ELISA法检测AGEs-HSA处理的单核细胞上清中IL-6、IL-1β和TNF-α的浓度 | 第68-71页 |
| ·单核细胞条件上清与外源性细胞因子对人胚胎肝细胞CRP诱导作用的比较 | 第71-73页 |
| ·单核细胞条件上清对人胚胎肝细胞CRP mRNA表达水平的影响 | 第73-77页 |
| ·构建相对定量标准曲线 | 第73-74页 |
| ·实验数据的标准化 | 第74-75页 |
| ·单核细胞条件上清对人胚胎肝细胞CRP mRNA诱导作用 | 第75-77页 |
| 第三章 分析和讨论 | 第77-82页 |
| 第四章 结论 | 第82-83页 |
| 第五章 参考文献 | 第83-90页 |
| 缩略词表 | 第90-91页 |
| 致谢 | 第91-92页 |
| 学位论文原创声明 | 第92页 |
| 学位论文版权使用授权书 | 第92页 |
