1. 文献综述 | 第1-30页 |
1.1 前言 | 第10-27页 |
1.1.1 兰花简介 | 第10页 |
1.1.2 兰花经济价值 | 第10-12页 |
1.1.3 兰花的繁殖及育种 | 第12-13页 |
1.1.4 花分生组织决定基因AP1转化石斛兰的研究 | 第13-16页 |
1.14.1 引言 | 第13页 |
1.1.4.2 花发育调控基 | 第13-15页 |
1.1.4.3 花分生组织决定基因及 AP1的作用 | 第15-16页 |
1.1.4.4 花分生组织决定基因的转基因植物研究 | 第16页 |
1.1.5 观赏植物的花色及 CHSA基因 | 第16-23页 |
1.1.5.1 花色的产生 | 第16-17页 |
1.1.5.2 类黄酮的生物合成 | 第17-18页 |
1.1.5.3 CHS基因家簇及 CHSA基因 | 第18-20页 |
1.1.5.4 花色基因工程操作及应用 | 第20-23页 |
1.1.6 进行兰花遗传转化的必要性 | 第23-24页 |
1.1.7 兰花转化进展及存在的问题 | 第24-27页 |
1.2 本研究的意义和目的 | 第27-30页 |
2. 材料与方法 | 第30-45页 |
2.1 实验材料 | 第30-31页 |
2.1.1 植物材料 | 第30页 |
2.1.2 菌株及质粒 | 第30-31页 |
2.1.3 试剂和酶 | 第31页 |
2.2 实验方法 | 第31-45页 |
2.2.1 PCR引物设计 | 第31-32页 |
2.2.1.1 AP1序列 | 第31-32页 |
2.2.1.2 CHSA序列 | 第32页 |
2.2.2 基因克隆 | 第32-36页 |
2.2.2.1 AP1基因的克隆,序列分析及载体构建 | 第32-33页 |
2.2.2.2 查尔酮合酶基因(CHSA)的中间载体的构建 | 第33-36页 |
2.2.3 培养基 | 第36-37页 |
2.2.4 石斛兰愈伤组织及 PLB的诱导和培养 | 第37页 |
2.2.5 转基因植株的获得 | 第37-39页 |
2.2.5.1 农杆菌感受态的制备及转化 | 第37-38页 |
2.2.5.2 农杆菌 PCR分析 | 第38页 |
2.2.5.3 兰花的遗传转化 | 第38-39页 |
2.2.6 GUS组织化学染色 | 第39-40页 |
2.2.7 转基因兰花的分子检测 | 第40-45页 |
2.2.7.1 总 DNA的提取 | 第40页 |
2.2.7.2 转基因植物的 PCR检测 | 第40-41页 |
2.2.7.3 Southern blot分析 | 第41-43页 |
2.2.7.4 用异硫氰酸胍法提取总 RNA | 第43-44页 |
2.2.7.5 转基因植物的Northern检测 | 第44-45页 |
3. 结果与分析 | 第45-54页 |
3.1 AP1基因的克隆及重组植物转化载体质粒p1301PAA的构建 | 第45-46页 |
3.2 CHSA基因的载体构建 | 第46-48页 |
3.3 石斛兰愈伤组织的诱导及培养 | 第48页 |
3.4 转基因 D.nobile的 GUS组织化学染色检测 | 第48-49页 |
3.5 转基因石斛兰植株的获得 | 第49-51页 |
3.6 转AP1基因兰花 D.nobile的 Southern blot检测 | 第51页 |
3.7 转基因石斛兰(CHSA基因)的 PCR检测 | 第51-52页 |
3.8 转基因石斛兰(CHSA基因)的 Southern blot检测 | 第52-53页 |
3.9 转基因石斛兰(CHSA基因)的 Southern blot检测 | 第53-54页 |
4. 讨论与结论 | 第54-62页 |
4.1 兰花的组织培养 | 第54页 |
4.2 农杆菌介导的转化效率 | 第54-55页 |
4.3 添加 AS对转化效率的影响 | 第55-56页 |
4.4 转AP1基因石斛兰的 Southern杂交 | 第56页 |
5.5 AP1转基因植物中可能的开花特性的改变 | 第56-58页 |
4.6 转 CHSA基因石斛兰的 Southern杂交 | 第58-59页 |
4.7 转 CHSA基因石斛兰的Northern杂交 | 第59-60页 |
4.8 转基因研究在观赏植物上的应用前景 | 第60-62页 |
总结 | 第62-63页 |
参考文献 | 第63-70页 |
致谢 | 第70-71页 |
发表文章 | 第71页 |