| 摘要 | 第1-9页 |
| ABSTRACT | 第9-11页 |
| 英文缩略语 | 第11-12页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-34页 |
| ·贮藏蛋白与品质性状的关系 | 第12-18页 |
| ·麦谷蛋白 | 第12-17页 |
| ·高分子量麦谷蛋白 | 第13-15页 |
| ·低分子量麦谷蛋白 | 第15-17页 |
| ·醇溶蛋白 | 第17-18页 |
| ·影响小麦品质的其它遗传因素 | 第18-21页 |
| ·生物技术在小麦贮藏蛋白研究中的应用 | 第21-32页 |
| ·小麦贮藏蛋白的基因克隆与序列研究 | 第21-25页 |
| ·高分子量麦谷蛋白亚基 | 第21-24页 |
| ·低分子量麦谷蛋白亚基 | 第24-25页 |
| ·醇溶蛋白 | 第25页 |
| ·转基因小麦与品质改良 | 第25-26页 |
| ·分子标记技术在小麦品质育种中的应用 | 第26-28页 |
| ·小麦品质性状的QTL研究 | 第28-31页 |
| ·MAS在品质育种中的应用 | 第31-32页 |
| ·本研究的目的和意义 | 第32-34页 |
| ·我国小麦的品质现状及研究的意义 | 第32-33页 |
| ·本研究的目的和内容 | 第33-34页 |
| 第二章 小麦面筋强度及其相关性状的遗传研究 | 第34-54页 |
| ·材料与方法 | 第34-36页 |
| ·材料与种植方法 | 第34-35页 |
| ·品质性状的测试 | 第35页 |
| ·统计分析 | 第35页 |
| ·加显效应与F_1杂种优势分析 | 第35-36页 |
| ·遗传力和遗传进度分析分析 | 第36页 |
| ·结果与分析 | 第36-51页 |
| ·蛋白质含量和SDS沉淀值在亲本、F_1、F_2和F_3的平均值 | 第36-37页 |
| ·蛋白质含量和SDS沉淀值在F_1代的优势表现 | 第37-38页 |
| ·F_2和F_3的变异分布 | 第38-45页 |
| ·五个组合的基本统计量分析 | 第38-40页 |
| ·面筋强度性状在F_2和F_(2:3)的变异分布 | 第40-45页 |
| ·F_2和F_(2:3)的超亲个体百分率分析 | 第45页 |
| ·F_2与F_3品质性状的相关分析 | 第45-48页 |
| ·遗传力分析 | 第48-51页 |
| ·讨论 | 第51-52页 |
| ·结论 | 第52-54页 |
| 第三章 遗传连锁图谱的构建 | 第54-72页 |
| ·材料与方法 | 第54-60页 |
| ·植物材料 | 第54页 |
| ·亲本及后代基因型的鉴定 | 第54-60页 |
| ·DNA提取 | 第54-55页 |
| ·SSR标记检测 | 第55-56页 |
| ·AFLP标记检测 | 第56-59页 |
| ·STS标记检测 | 第59页 |
| ·SDS-PAGE检测 | 第59-60页 |
| ·遗传图谱的构建 | 第60页 |
| ·结果与分析 | 第60-69页 |
| ·分子标记和麦谷蛋白亚基的检测 | 第60-65页 |
| ·遗传图谱的构建 | 第65-69页 |
| ·讨论 | 第69-71页 |
| ·结论 | 第71-72页 |
| 第四章 小麦面筋强度相关性状的QTL分析 | 第72-115页 |
| ·材料与方法 | 第72-74页 |
| ·植物材料 | 第72页 |
| ·田间试验 | 第72页 |
| ·品质性状测试 | 第72-73页 |
| ·统计分析 | 第73页 |
| ·LSD多重比较 | 第73页 |
| ·QTL分析 | 第73页 |
| ·用BSA进行面筋强度主效基因的定位 | 第73-74页 |
| ·结果与分析 | 第74-109页 |
| ·品质性状的统计分析 | 第74-85页 |
| ·三个地点间的群体直观图 | 第74-76页 |
| ·方差分析 | 第76-77页 |
| ·基本统计量及变异分布 | 第77-81页 |
| ·相关分析 | 第81-82页 |
| ·不同类型品系品质比较 | 第82-85页 |
| ·QTL分析 | 第85-108页 |
| ·SDS沉淀值的QTL分析 | 第85-89页 |
| ·比沉淀值的QTL分析 | 第89-91页 |
| ·和面仪参数的QTL分析 | 第91-103页 |
| ·籽粒蛋白质含量的QTL分析 | 第103-105页 |
| ·籽粒硬度的QTL分析 | 第105-108页 |
| ·用BSA法和贮藏蛋白标记对面筋强度主效QTL的验证 | 第108-109页 |
| ·讨论 | 第109-113页 |
| ·结论 | 第113-115页 |
| 第五章 利用贮藏蛋白分子标记进行品质育种的辅助选择 | 第115-126页 |
| ·材料与方法 | 第115-117页 |
| ·植物材料 | 第115-116页 |
| ·引物序列 | 第116页 |
| ·小麦基因组总DNA的提取 | 第116页 |
| ·PCR反应体系及程序 | 第116-117页 |
| ·醇溶蛋白的A-PAGE分析 | 第117页 |
| ·醇溶蛋白和黑麦减蛋白的ELISA和SDS-PAGE分析 | 第117页 |
| ·结果与分析 | 第117-123页 |
| ·Glu-1Dx5的AS-PCR分析 | 第117页 |
| ·Glu-1Dyr10／12的AS-PCR分析 | 第117-118页 |
| ·Glu-A3的GS-PCR和SSR引物分析 | 第118-119页 |
| ·Glu-B3的GS-PCR和Gli-B1的SSR引物分析 | 第119-120页 |
| ·用Glu-B3、Gli-B1和SEC-1b复合引物PCR检测普通小麦1BL／1RS易位系 | 第120-123页 |
| ·讨论 | 第123-125页 |
| ·结论 | 第125-126页 |
| 第六章 小麦面粉颜色相关性状的QTL分析 | 第126-142页 |
| ·材料与方法 | 第126-127页 |
| ·植物材料和田间试验 | 第126页 |
| ·品质性状测试 | 第126-127页 |
| ·统计分析和QTL分析 | 第127页 |
| ·结果与分析 | 第127-140页 |
| ·统计分析 | 第127-132页 |
| ·颜色相关性状在三个地点的群体直观图 | 第127-128页 |
| ·方差分析 | 第128-129页 |
| ·简单统计量和变异分布 | 第129-131页 |
| ·颜色相关性状间的相关分析 | 第131-132页 |
| ·颜色相关性状的QTL分析 | 第132-140页 |
| ·面粉L*值的OTL分析 | 第132-134页 |
| ·面粉黄色度b*值的QTL分析 | 第134-137页 |
| ·籽粒黄色素含量的QTL分析 | 第137-139页 |
| ·籽粒多酚氧化酶活性的QTL分析 | 第139-140页 |
| ·讨论 | 第140-141页 |
| ·结论 | 第141-142页 |
| 全文结论 | 第142-145页 |
| 参考文献 | 第145-159页 |
| 致谢 | 第159-160页 |
| 作者简历 | 第160页 |
