中文摘要 | 第1-10页 |
英文摘要 | 第10-14页 |
第一章 前言 | 第14-26页 |
·脑中风的发病机制 | 第14页 |
·脑缺血性损伤的细胞基础 | 第14-15页 |
·缺血性脑损伤细胞凋亡的调控基因 | 第15-18页 |
·热休克蛋白基因 | 第15页 |
·Notch 基因 | 第15-16页 |
·P38 与脑缺血细胞凋亡 | 第16页 |
·Caspase 与神经元凋亡 | 第16页 |
·Bcl-2 与神经元凋亡 | 第16-17页 |
·C-myc 与神经元凋亡 | 第17页 |
·P53 与神经元凋亡 | 第17页 |
·造血细胞因子 | 第17-18页 |
·CED 与神经元凋亡 | 第18页 |
·Fas 与神经元凋亡 | 第18页 |
·凋亡诱导因子与神经元凋亡 | 第18-20页 |
·凋亡诱导因子 | 第18-19页 |
·凋亡诱导因子诱导凋亡的机制 | 第19-20页 |
·凋亡诱导因子对大脑神经元的凋亡作用 | 第20页 |
·缺氧诱导因子与神经元凋亡 | 第20-22页 |
·HIF-1 | 第20-21页 |
·HIF-2 | 第21页 |
·HIF-3 | 第21-22页 |
·新的基因产物 | 第22-23页 |
·基因功能研究的方法 | 第23-26页 |
·反义技术 | 第23页 |
·基因敲除和转基因技术 | 第23-24页 |
·RNA 干扰 | 第24页 |
·微阵列分析 | 第24页 |
·基因诱捕技术 | 第24-25页 |
·基因转导的方法 | 第25-26页 |
第二章 神经元的体外培养 | 第26-32页 |
摘要 | 第26页 |
引言 | 第26页 |
·材料与方法 | 第26-27页 |
·实验动物 | 第26页 |
·主要试剂 | 第26-27页 |
·仪器与材料 | 第27页 |
·实验方法 | 第27-28页 |
·神经元的分离 | 第27-28页 |
·神经元培养 | 第28页 |
·结果与讨论 | 第28-32页 |
·神经元的形态学鉴定 | 第28页 |
·神经元的Hoechst33258 荧光染色 | 第28-32页 |
第三章 KIAA0280 在缺氧诱导神经元凋亡中的作用 | 第32-52页 |
摘要 | 第32页 |
引言 | 第32-33页 |
·材料与方法 | 第33页 |
·实验动物 | 第33页 |
·主要试剂 | 第33页 |
·仪器与材料 | 第33页 |
·实验方法 | 第33-38页 |
·神经元的分离与培养 | 第33页 |
·神经元体外缺氧模型的建立 | 第33-34页 |
·神经元体外转染siRNA 模型的建立 | 第34-35页 |
·设计KIAA0280 特异性PCR 引物 | 第35-36页 |
·RT-PCR 判断KIAA0280 在缺氧诱导的凋亡神经元中的表达 | 第36-38页 |
·统计学处理 | 第38页 |
·结果与讨论 | 第38-52页 |
·Hoechst33258 荧光染色法检测缺氧诱导的凋亡神经元 | 第38-39页 |
·LDH 漏出检测缺氧诱导的凋亡神经元 | 第39-40页 |
·SRB 法检测缺氧诱导的凋亡神经元 | 第40-41页 |
·转染试剂对神经元的毒性作用 | 第41-44页 |
·RT-PCR 检测KIAA0280 在缺氧诱导的凋亡神经元中的表达 | 第44-46页 |
·转染KIAA0280 特异性siRNA 后神经元LDH 漏出结果 | 第46-47页 |
·KIAA0280 被特异性沉默后对神经元的影响 | 第47-52页 |
第四章 KIAA0280 在谷氨酸诱导的神经元凋亡中的作用 | 第52-62页 |
摘要 | 第52页 |
引言 | 第52-53页 |
·材料与方法 | 第53页 |
·实验动物 | 第53页 |
·主要试剂 | 第53页 |
·仪器与材料 | 第53页 |
·实验方法 | 第53页 |
·神经元的分离与培养 | 第53页 |
·谷氨酸诱导神经元凋亡模型的建立 | 第53页 |
·RT-PCR 判断KIAA0280 在谷氨酸诱导凋亡神经元中的表达 | 第53页 |
·统计学处理 | 第53页 |
·结果与讨论 | 第53-62页 |
·LDH 漏出检测谷氨酸诱导的凋亡神经元 | 第54-55页 |
·SRB 法检测谷氨酸诱导的凋亡神经元 | 第55-56页 |
·Hoechst33258 染色检测谷氨酸诱导的凋亡神经元 | 第56-57页 |
·转染KIAA0280 特异性siRNA 后对凋亡神经元的影响 | 第57-58页 |
·RT-PCR 检测KIAA0280 在谷氨酸诱导神经元凋亡中的表达 | 第58-59页 |
·转染KIAA0280 特异性siRNA 后对凋亡神经元LDH 漏出的影响 | 第59-62页 |
第五章 KIAA0280 在H_2O_2诱导神经元凋亡中的作用 | 第62-72页 |
摘要 | 第62页 |
引言 | 第62页 |
·材料与方法 | 第62-63页 |
·实验动物 | 第62页 |
·主要试剂 | 第62-63页 |
·仪器与材料 | 第63页 |
·实验方法 | 第63页 |
·神经元的分离与培养 | 第63页 |
·H_2O_2 诱导神经元凋亡模型的建立 | 第63页 |
·RT-PCR 判断 KIAA0280 在 H_2O_2 诱导凋亡神经元中的表达 | 第63页 |
·统计学处理 | 第63页 |
·结果与讨论 | 第63-72页 |
·LDH 漏出检测 H_2O_2 诱导的凋亡神经元 | 第63-64页 |
·SRB 法检测 H_2O_2 诱导的凋亡神经元 | 第64-65页 |
·Hoechst33258 染色检测 H_2O_2 诱导的凋亡神经元 | 第65-66页 |
·转染 KIAA0280 特异性 siRNA 后对凋亡神经元的影响 | 第66-68页 |
·RT-PCR 检测 KIAA0280 在 H_2O_2 诱导神经元凋亡中的表达 | 第68页 |
·转染 KIAA0280 特异性 siRNA 后对凋亡神经元 LDH 漏出的影响 | 第68-72页 |
第六章 总结与展望 | 第72-73页 |
总结 | 第72页 |
展望 | 第72-73页 |
参考文献 | 第73-80页 |
附录一 攻读学位期间发表的文章 | 第80-81页 |
附录二 缩写词中英文对照 | 第81-82页 |
致谢 | 第82页 |