| 中文摘要 | 第1-6页 |
| 英文摘要 | 第6-10页 |
| 符号说明 | 第10-12页 |
| 前言 | 第12-14页 |
| 第一章 材料 | 第14-16页 |
| ·主要仪器和设备 | 第14页 |
| ·主要试剂 | 第14-15页 |
| ·实验动物 | 第15-16页 |
| 第二章 方法 | 第16-23页 |
| ·兔原代关节软骨细胞分离、培养和鉴定 | 第16-17页 |
| ·细胞取材、消化、培养、传代 | 第16页 |
| ·软骨细胞II型胶原免疫细胞化学鉴定 | 第16-17页 |
| ·瘦素单独或与TNF-α联合作用于兔关节软骨细胞后，测定细胞上清液中NO的含量 | 第17-19页 |
| ·实验分组 | 第17页 |
| ·细胞种板 | 第17-18页 |
| ·细胞培养的上清液标本的获取和保存 | 第18页 |
| ·NO的检测 | 第18-19页 |
| ·瘦素作用于与兔关节软骨细胞后，测定细胞上清液中MMP-13的含量 | 第19-23页 |
| ·实验分组 | 第19页 |
| ·细胞种板 | 第19-20页 |
| ·细胞培养的上清液标本的获取和保存 | 第20页 |
| ·MMP-13的检测(双抗夹心法) | 第20-22页 |
| ·计算 | 第22-23页 |
| 第三章 统计分析原理 | 第23-24页 |
| 第四章 结果 | 第24-28页 |
| ·倒置相差显微镜观察 | 第24页 |
| ·培养细胞II型胶原免疫细胞化学检测 | 第24-25页 |
| ·附图 | 第25-26页 |
| ·各实验组NO浓度及统计分析 | 第26页 |
| ·不同浓度瘦素作用于软骨细胞后MMP-13的浓度及分析 | 第26-28页 |
| 第五章 讨论 | 第28-33页 |
| ·NO是OA的发病中的重要介质 | 第28-29页 |
| ·MMP-13是软骨基质降解的最重要因素之一 | 第29-30页 |
| ·瘦素促进OA病程的进展 | 第30-32页 |
| 小结 | 第32-33页 |
| 第六章 结论 | 第33-34页 |
| 参考文献 | 第34-37页 |
| 综述 | 第37-47页 |
| 1 瘦素与瘦素受体 | 第37页 |
| 2 瘦素对软骨生长板的作用 | 第37-38页 |
| 3 瘦素与类风湿关节炎(rheumatoid arthritis，RA) | 第38-39页 |
| 4 瘦素与骨性关节炎 | 第39-41页 |
| 5 小结 | 第41页 |
| 参考文献 | 第41-47页 |
| 致谢 | 第47-48页 |
| 读研期间发表的论文及研究成果 | 第48页 |
