| 摘要 | 第1-10页 |
| Abstract | 第10-13页 |
| 1 前言 | 第13-23页 |
| ·叶绿体DNA结构和特点 | 第13-14页 |
| ·叶绿体DNA结构 | 第13页 |
| ·叶绿体DNA种内多样性 | 第13-14页 |
| ·叶绿体分子系统学特点 | 第14页 |
| ·叶绿体基因组的研究方法 | 第14-18页 |
| ·DNA杂交技术 | 第15页 |
| ·DNA的限制酶图谱分析 | 第15页 |
| ·RFLP分析 | 第15-16页 |
| ·PCR-RFLP分析 | 第16页 |
| ·cpSSR分析 | 第16-17页 |
| ·DNA单链构像多态性(SSCP)分析 | 第17页 |
| ·核酸序列分析 | 第17-18页 |
| ·叶绿体DNA研究现状 | 第18-19页 |
| ·果树研究现状 | 第18页 |
| ·其他作物的研究现状 | 第18-19页 |
| ·山楂属植物资源的研究和利用 | 第19-21页 |
| ·山楂属植物的起源和演化 | 第19页 |
| ·山楂属植物的分类 | 第19-20页 |
| ·中国山楂属植物资源的收集和评价 | 第20-21页 |
| ·山楂属植物的生产和利用 | 第21页 |
| ·本研究的目的和意义 | 第21-23页 |
| 2 材料与方法 | 第23-29页 |
| ·植物材料 | 第23-24页 |
| ·山楂基因组DNA提取 | 第24页 |
| ·基因组DNA浓度与纯度检测 | 第24-25页 |
| ·cpDNA PCR-RFLP标记方法 | 第25-26页 |
| ·cpDNA引物合成 | 第25页 |
| ·PCR扩增叶绿体DNA | 第25页 |
| ·限制性内切酶酶切及电泳检测 | 第25-26页 |
| ·聚类分析 | 第26页 |
| ·cpSSR标记方法 | 第26-29页 |
| ·cpSSR引物合成 | 第26页 |
| ·PCR扩增和预检测 | 第26-27页 |
| ·银染检测 | 第27-28页 |
| ·聚类分析 | 第28-29页 |
| 3 结果与分析 | 第29-39页 |
| ·山楂基因组DNA的质量检测 | 第29页 |
| ·山楂属植物的cpDNA PCR-RFLP标记 | 第29-36页 |
| ·PCR反应体系的优化 | 第29-31页 |
| ·最适酶的筛选 | 第29-30页 |
| ·引物的筛选 | 第30-31页 |
| ·cpDNA的扩增结果 | 第31页 |
| ·限制酶酶切时间的优化 | 第31-33页 |
| ·扩增产物与酶切组合的筛选 | 第33-34页 |
| ·山楂cpDNA PCR-RFLP多态性分析 | 第34-35页 |
| ·山楂种间聚类分析 | 第35-36页 |
| ·山楂属植物的cpSSR标记 | 第36-39页 |
| ·cpSSR引物的筛选 | 第36页 |
| ·山楂cpSSR多态性分析 | 第36-37页 |
| ·聚类分析 | 第37-39页 |
| 4 讨论 | 第39-44页 |
| ·山楂叶绿体PCR-RFLP与cpSSR两种标记方法的比较 | 第39-40页 |
| ·cpSSR与核基因组SSR的比较 | 第40-41页 |
| ·山楂cpSSR引物的开发 | 第41-42页 |
| ·山楂属植物的遗传多样性 | 第42页 |
| ·山楂属植物的分类 | 第42-44页 |
| 5 结论 | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-50页 |
| 附录A 常用母液的配制 | 第50-52页 |
| 附录B 五对叶绿体DNA引物对39份山楂资源的扩增结果 | 第52-55页 |
| 附录C 酶切位点无差异的引物/内切酶组合 | 第55-64页 |
| 致谢 | 第64-65页 |
| 攻读硕士学位期间发表的论文 | 第65页 |