| 摘要 | 第1-15页 |
| Abstract | 第15-29页 |
| 缩略语 | 第29-30页 |
| 第一章 培养的人胚胎RPE细胞在微孔聚酰胺纳米纤维膜和蚀刻多空聚酯膜上的生长研究比较 | 第30-50页 |
| 前言 | 第30-31页 |
| 中文摘要 | 第31-33页 |
| Abstract | 第33-35页 |
| 1.材料 | 第35-36页 |
| ·实验用两种Bruch膜替代物 | 第35-36页 |
| ·眼球来源 | 第36页 |
| ·培养基和试剂 | 第36页 |
| ·仪器设备 | 第36页 |
| 2.方法 | 第36-38页 |
| ·人胚胎RPE细胞培养 | 第36-37页 |
| ·人胚胎RPE细胞亚培养(P1) | 第37页 |
| ·倒置荧光显微镜观察 | 第37页 |
| ·扫描电镜观察两种Bruch膜替代物的纤维排列结构,并与Bruch膜的内胶原层进行比较 | 第37页 |
| ·免疫荧光染色鉴定人胚胎视网膜色素上皮细胞表型 | 第37-38页 |
| ·Western blot检测RPE65的表达 | 第38页 |
| 3.结果 | 第38-46页 |
| ·原代培养的人胚胎RPE细胞 | 第38-39页 |
| ·低钙培养48h四组RPE细胞的生长情况 | 第39页 |
| ·四组人胚胎RPE细胞转入正常钙培养基下培养24-48h上皮分化情况及扫描电镜观察Bruch膜内胶原层及各种Bruch膜替代物的纤维排列 | 第39-41页 |
| ·转入正常Ca~(2+)培养基后10d,15d A、B、C组人胚胎RPE细胞上皮生长情况 | 第41-43页 |
| ·免疫荧光染色RPE细胞表型的鉴定 | 第43-45页 |
| ·Western blot检测RPE65的表达 | 第45-46页 |
| 4.讨论 | 第46-50页 |
| 第二章 成人RPE细胞在微孔聚酰胺纳米纤维膜和蚀刻多空聚酯膜上的生长研究比较 | 第50-60页 |
| 前言 | 第50-51页 |
| 摘要 | 第51-52页 |
| Abstract | 第52-54页 |
| 1.材料与方法 | 第54页 |
| ·实验用两种Bruch膜替代物 同第一章 | 第54页 |
| ·眼球来源 | 第54页 |
| ·实验试剂 同第一章 | 第54页 |
| ·仪器设备 同第一章 | 第54页 |
| 2.方法 | 第54-55页 |
| ·成人RPE细胞培养 | 第54页 |
| ·成人RPE细胞亚培养(P1) | 第54-55页 |
| ·倒置荧光显微镜观察 | 第55页 |
| ·免疫荧光染色鉴定成人RPE细胞 | 第55页 |
| 3.结果 | 第55-58页 |
| ·原代培养的成人RPE细胞 | 第55-56页 |
| ·成人RPE细胞的鉴定 | 第56页 |
| ·转入正常Ca~(2+)培养基后15天成人RPE细胞在两种Bruch膜替代物上的生长情况 | 第56-57页 |
| ·转入正常Ca~(2+)培养基后4周成人RPE细胞在两种Bruch膜替代物上的生长情况 | 第57-58页 |
| 4.讨论 | 第58-60页 |
| 第三章 两种Bruch膜替代物植入RCS大鼠视网膜下间隙的组织学观察 | 第60-67页 |
| 前言 | 第60-61页 |
| 中文摘要 | 第61-62页 |
| Abstract | 第62-63页 |
| 1.材料 | 第63-64页 |
| ·视网膜下间隙的植入物 | 第63页 |
| ·器械和设备 | 第63页 |
| ·实验动物 | 第63-64页 |
| 2.方法 | 第64页 |
| ·P21 RCS大鼠视网膜下间隙移植两种Bruch膜替代物 | 第64页 |
| ·组织学检查 | 第64页 |
| 3.结果 | 第64-65页 |
| 4.讨论 | 第65-67页 |
| 参考文献 | 第67-78页 |
| 综述 | 第78-111页 |
| 参考文献 | 第98-111页 |
| 致谢 | 第111-112页 |
| 在读期间发表的主要论文、主编情况 | 第112页 |
