| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 缩略语/符号说明 | 第12-14页 |
| 前言 | 第14-17页 |
| 研究现状、成果 | 第14页 |
| 研究目的、方法 | 第14-17页 |
| 一、幼龄鼠1型糖尿病模型的建立 | 第17-29页 |
| 1.1 实验对象和方法 | 第17-22页 |
| 1.1.1 实验对象的选择 | 第17页 |
| 1.1.2 实验仪器、材料 | 第17-18页 |
| 1.1.3 主要试剂 | 第18页 |
| 1.1.4 实验方法 | 第18-21页 |
| 1.1.4.1 T1D模型建立 | 第18-19页 |
| 1.1.4.2 T1D模型成功标准及一般情况 | 第19页 |
| 1.1.4.3 T1D模型小鼠病理学改变检测 | 第19-21页 |
| 1.1.4.3.1 组织获取、固定以及包埋 | 第19-20页 |
| 1.1.4.3.2 胰岛苏木素-伊红染色 | 第20页 |
| 1.1.4.3.3 胰岛素免疫组织化学染色 | 第20-21页 |
| 1.1.5 统计学分析 | 第21-22页 |
| 1.2 结果 | 第22-26页 |
| 1.2.1 幼龄鼠T1D模型的一般生长状态 | 第22-24页 |
| 1.2.2 胰岛组织病理学变化 | 第24-26页 |
| 1.3 讨论 | 第26-27页 |
| 1.4 小结 | 第27-29页 |
| 二、小鼠骨实质来源间充质干细胞的分离培养与鉴定 | 第29-41页 |
| 2.1 对象和方法 | 第29-35页 |
| 2.1.1 实验对象 | 第29页 |
| 2.1.2 实验仪器、材料 | 第29页 |
| 2.1.3 主要试剂 | 第29-30页 |
| 2.1.4 实验室常用试剂配制 | 第30页 |
| 2.1.5 实验方法 | 第30-35页 |
| 2.1.5.1 间充质干细胞的分离培养 | 第30-31页 |
| 2.1.5.2 骨实质来源间充质干细胞表面分子标志的检测 | 第31-32页 |
| 2.1.5.3 间充质干细胞的诱导分化 | 第32-35页 |
| 2.1.5.3.1 诱导间充质干细胞向成脂细胞分化 | 第32页 |
| 2.1.5.3.2 诱导间充质干细胞向成骨细胞分化 | 第32-33页 |
| 2.1.5.3.3 荧光定量PCR检测诱导分化关键转录因子的表达 | 第33-35页 |
| 2.2 结果 | 第35-38页 |
| 2.2.1 MSCs的细胞形态观察 | 第35-36页 |
| 2.2.2 MSCs的细胞表型 | 第36页 |
| 2.2.3 MSCs诱导分化能力的检测 | 第36-38页 |
| 2.3 讨论 | 第38-40页 |
| 2.4 小结 | 第40-41页 |
| 三、MSCs治疗幼龄鼠T1D的疗效观察 | 第41-56页 |
| 3.1 对象和方法 | 第41-47页 |
| 3.1.1 实验对象 | 第41页 |
| 3.1.2 实验仪器、材料的选取 | 第41页 |
| 3.1.3 主要试剂 | 第41页 |
| 3.1.4 实验方法 | 第41-47页 |
| 3.1.4.1 MSCs治疗幼龄鼠及成年鼠T1D模型 | 第41-42页 |
| 3.1.4.2 T1D模型病理学检测 | 第42-46页 |
| 3.1.4.2.1 胰岛苏木素-伊红染色 | 第42-43页 |
| 3.1.4.2.2 胰岛素免疫组织化学染色 | 第43-44页 |
| 3.1.4.2.3 肾脏组织HE染色 | 第44-45页 |
| 3.1.4.2.4 肾脏组织PASM染色 | 第45页 |
| 3.1.4.2.5 肾脏组织Masson染色 | 第45-46页 |
| 3.1.4.3 MSCs治疗幼龄糖尿病模型机制的初步探讨 | 第46-47页 |
| 3.1.5 统计学分析 | 第47页 |
| 3.2 结果 | 第47-53页 |
| 3.2.1 MSCs对幼龄鼠T1D模型一般生理状态的改变 | 第47-49页 |
| 3.2.2 MSCs治疗幼龄鼠和成年鼠T1D模型的病理学检测 | 第49-52页 |
| 3.2.3 MSCs对T1D的免疫调控作用 | 第52-53页 |
| 3.3 讨论 | 第53-55页 |
| 3.4 小结 | 第55-56页 |
| 结论 | 第56-57页 |
| 论文创新点 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-65页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第65-66页 |
| 综述 儿童及青少年糖尿病的治疗与进展 | 第66-72页 |
| 综述参考文献 | 第69-72页 |
| 致谢 | 第72-73页 |
| 个人简历 | 第73页 |
