| 中文摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4页 |
| 缩略语表 | 第8-9页 |
| 第一章 绪论 | 第9-16页 |
| 1.1 骨缺损模型的研究现状 | 第9-10页 |
| 1.2 凝胶系统成骨的研究现状 | 第10-12页 |
| 1.3 类胶原蛋白的研究进展 | 第12-13页 |
| 1.4 成骨诱导生长因子的研究现状 | 第13-15页 |
| 1.5 本实验的目的和意义 | 第15-16页 |
| 第二章 类胶原蛋白水凝胶的制备及性能检测 | 第16-28页 |
| 2.1 实验材料 | 第17-18页 |
| 2.2 类胶原蛋白制备与鉴定 | 第18-19页 |
| 2.2.1 质粒导入及蛋白提取 | 第18页 |
| 2.2.2 蛋白纯化与鉴定 | 第18-19页 |
| 2.3 氧化羧甲基纤维素的制备及鉴定 | 第19-20页 |
| 2.3.1 羧甲基纤维素氧化实验 | 第19页 |
| 2.3.2 氧化羧甲基纤维素鉴定 | 第19-20页 |
| 2.4 N-琥珀酰基壳聚糖的合成及理化性质检测 | 第20页 |
| 2.4.1 N-琥珀酰基壳聚糖的合成 | 第20页 |
| 2.4.2 氨基化壳聚糖检测 | 第20页 |
| 2.5 水凝胶制备及其理化性质测定 | 第20-21页 |
| 2.5.1 各组凝胶相转变行为观察成胶时间 | 第20页 |
| 2.5.2 凝胶SEM形态学检测 | 第20-21页 |
| 2.5.3 凝胶缓释试验 | 第21页 |
| 2.5.4 傅里叶红外光谱图谱表征 | 第21页 |
| 2.6 细胞毒性实验 | 第21-22页 |
| 2.6.1 骨髓间充质细胞的培养 | 第21页 |
| 2.6.2 凝胶细胞毒性实验MTT | 第21-22页 |
| 2.7 结果与讨论 | 第22-27页 |
| 2.7.1 类胶原蛋白制备及鉴定 | 第22页 |
| 2.7.2 羧甲基纤维素氧化的测定和壳聚糖测定 | 第22-23页 |
| 2.7.3 各组凝胶相转变时间及凝胶缓释性能测定 | 第23-25页 |
| 2.7.4 CL/OCMC/NSC水凝胶的微观形貌（SEM） | 第25-26页 |
| 2.7.5 傅里叶红外光谱图谱表征 | 第26页 |
| 2.7.6 细胞毒性实验 | 第26-27页 |
| 2.8 讨论 | 第27-28页 |
| 第三章 复合BMP-2 的类胶原蛋白凝胶修复大鼠骨缺损的研究 | 第28-37页 |
| 3.1 实验材料和仪器 | 第29页 |
| 3.2 实验动物 | 第29页 |
| 3.3 实验方法 | 第29-31页 |
| 3.3.1 类胶原蛋白水凝胶复合BMP-2 的配制 | 第29-30页 |
| 3.3.2 分组及制备大鼠颅骨缺损模型 | 第30-31页 |
| 3.4 检测指标 | 第31-32页 |
| 3.4.1 CT检查 | 第31页 |
| 3.4.2 MRI检查 | 第31页 |
| 3.4.3 组织学观察 | 第31-32页 |
| 3.5 结果 | 第32-36页 |
| 3.5.1 模型制备 | 第32-33页 |
| 3.5.2 CT结果分析 | 第33-34页 |
| 3.5.3 MRI结果分析 | 第34-35页 |
| 3.5.4 组织学观察 | 第35-36页 |
| 3.6 讨论 | 第36-37页 |
| 第四章 实验小结和展望 | 第37-38页 |
| 参考文献 | 第38-43页 |
| 在校期间研究成果 | 第43-44页 |
| 致谢 | 第44-45页 |
| 病例汇报两例 | 第45-52页 |
