| 摘要 | 第3-4页 |
| ABSTRACT | 第4页 |
| 第1章 综述 | 第8-28页 |
| 1.1 金属镉污染 | 第8-12页 |
| 1.1.1 土壤镉污染现状 | 第8-9页 |
| 1.1.2 重金属镉对于植物的影响 | 第9-10页 |
| 1.1.3 植物应对金属镉胁迫的途径 | 第10-12页 |
| 1.2 活性氧类 | 第12-15页 |
| 1.2.1 活性氧类分类 | 第12-13页 |
| 1.2.2 活性氧在植物中的功能 | 第13-15页 |
| 1.2.3 植物内抗氧化酶系 | 第15页 |
| 1.3 抗坏血酸过氧化物酶 | 第15-21页 |
| 1.3.1 抗坏血酸过氧化物酶同工酶及基因家族 | 第16-17页 |
| 1.3.2 抗坏血酸过氧化物酶的研究进展 | 第17-21页 |
| 1.4 类胡萝卜素 | 第21-25页 |
| 1.4.1 类胡萝卜素生物合成 | 第21-24页 |
| 1.4.2 类胡萝卜素生物学功能 | 第24-25页 |
| 1.5 研究内容与意义 | 第25-28页 |
| 第2章 转基因烟草类胡萝卜素分析及镉胁迫抗氧化分析 | 第28-52页 |
| 2.1 实验材料 | 第28-31页 |
| 2.1.1 植物材料 | 第28页 |
| 2.1.2 实验所用主要试剂 | 第28-31页 |
| 2.1.3 实验所用仪器和设备 | 第31页 |
| 2.2 方法 | 第31-39页 |
| 2.2.1 烟草幼苗培养 | 第31-32页 |
| 2.2.2 细菌质粒提取(SDS碱裂解法) | 第32页 |
| 2.2.3 基因组提取(CTAB法) | 第32-33页 |
| 2.2.4 PCR扩增目的基因片段 | 第33-34页 |
| 2.2.5 烟草叶片中RNA提取(Trizol法) | 第34页 |
| 2.2.6 RT-PCR分析 | 第34-35页 |
| 2.2.7烟草镉胁迫实验 | 第35页 |
| 2.2.8 镉胁迫下烟草种子发芽率和根长测定 | 第35页 |
| 2.2.9 烟草叶片APX活性测定 | 第35-36页 |
| 2.2.10 烟草叶片过氧化氢含量测定 | 第36-37页 |
| 2.2.11 烟草叶片SOD活性、POD活性以及MDA含量测定 | 第37-38页 |
| 2.2.12 烟草叶片气孔观察 | 第38-39页 |
| 2.2.13 类胡萝卜素提取 | 第39页 |
| 2.2.14 类胡萝卜素高效液相色谱分析 | 第39页 |
| 2.3 结果与分析 | 第39-49页 |
| 2.3.1 PCR检测 | 第39-40页 |
| 2.3.2 RT-PCR检测 | 第40页 |
| 2.3.3 镉胁迫下烟草发芽率及根长 | 第40-43页 |
| 2.3.4 APX活性及过氧化氢含量分析 | 第43页 |
| 2.3.5 SOD、POD及 MDA含量分析比较 | 第43-46页 |
| 2.3.6 镉胁迫下烟草叶片气孔及保卫细胞形态变化 | 第46-47页 |
| 2.3.7 转基因烟草类胡萝卜素HPLC分析 | 第47-49页 |
| 2.4 小结 | 第49-52页 |
| 第3章 水稻组织培养体系建立与优化 | 第52-66页 |
| 3.1 实验材料 | 第52-55页 |
| 3.1.1 植物材料 | 第52页 |
| 3.1.2 实验所用主要试剂 | 第52-54页 |
| 3.1.3 实验所用仪器和设备 | 第54-55页 |
| 3.2 方法 | 第55-57页 |
| 3.2.1 水稻愈伤组织诱导条件优化 | 第55页 |
| 3.2.2 农杆菌侵染 | 第55-56页 |
| 3.2.3 侵染后脱菌 | 第56页 |
| 3.2.4 分化与生根 | 第56页 |
| 3.2.5 练苗与移栽 | 第56-57页 |
| 3.3 实验结果 | 第57-63页 |
| 3.3.1 水稻种子灭菌条件优化 | 第57页 |
| 3.3.2 AgNO_3 对愈伤组织的影响 | 第57-59页 |
| 3.3.3 不同浓度2,4-D对诱导率的影响 | 第59页 |
| 3.3.4 农杆菌转化脱菌体系优化 | 第59-61页 |
| 3.3.5 愈伤组织分化能力探索 | 第61-62页 |
| 3.3.6 水稻组织培养及农杆菌转化过程 | 第62-63页 |
| 3.4 小结 | 第63-66页 |
| 第4章 结论与展望 | 第66-68页 |
| 4.1 结论 | 第66页 |
| 4.2 展望 | 第66-68页 |
| 参考文献 | 第68-78页 |
| 发表论文和参与项目 | 第78-80页 |
| 致谢 | 第80页 |
