| 摘要 | 第7-9页 |
| Abstract | 第9-10页 |
| 第1章 绪论 | 第11-28页 |
| 1.1. 双光子激发简介 | 第11-15页 |
| 1.1.1 双光子激发原理 | 第11-13页 |
| 1.1.2 双光子吸收截面的测量 | 第13-14页 |
| 1.1.3 双光子吸收材料的应用 | 第14-15页 |
| 1.2. 双光子荧光分子探针 | 第15-26页 |
| 1.2.1 荧光探针的识别机理 | 第16-20页 |
| 1.2.2 双光子荧光探针的研究进展 | 第20-26页 |
| 1.3. 本文构想 | 第26-28页 |
| 第2章 基于喹啉基荧光团的氟离子双光子荧光探针合成、表征及应用研究 | 第28-40页 |
| 2.1. 引言 | 第28页 |
| 2.2. 实验部分 | 第28-33页 |
| 2.2.1 实验试剂 | 第28-29页 |
| 2.2.2 实验仪器 | 第29页 |
| 2.2.3 合成路线 | 第29-30页 |
| 2.2.4 合成步骤及表征 | 第30-31页 |
| 2.2.5 探针光谱性质测定 | 第31-32页 |
| 2.2.6 探针在细胞中的双光子共聚焦显微成像 | 第32-33页 |
| 2.2.7 斑马鱼中氟离子双光子共聚焦显微成像 | 第33页 |
| 2.3. 结果与讨论 | 第33-39页 |
| 2.3.1 探针的光谱学表征 | 第33-34页 |
| 2.3.2 氟离子荧光滴定 | 第34-35页 |
| 2.3.3 探针的荧光量子产率及双光子吸收截面 | 第35页 |
| 2.3.4 探针对阴离子的选择性 | 第35-36页 |
| 2.3.5 探针的细胞毒性 | 第36-37页 |
| 2.3.6 HeLa细胞及斑马鱼中的氟离子成像 | 第37-39页 |
| 2.4. 本章小结 | 第39-40页 |
| 第3章 基于喹啉基荧光团的过氧化氢双光子荧光探针合成及表征 | 第40-46页 |
| 3.1. 引言 | 第40页 |
| 3.2. 实验部分 | 第40-43页 |
| 3.2.1 实验试剂 | 第40-41页 |
| 3.2.2 实验仪器 | 第41页 |
| 3.2.3 合成路线 | 第41-42页 |
| 3.2.4 合成步骤及表征 | 第42-43页 |
| 3.2.5 探针光谱性质测定 | 第43页 |
| 3.3. 结果与讨论 | 第43-45页 |
| 3.3.1 探针与过氧化氢的荧光滴定 | 第43-44页 |
| 3.3.2 反应时间优化 | 第44-45页 |
| 3.3.3 探针选择性 | 第45页 |
| 3.4. 本章小结 | 第45-46页 |
| 第4章 基于喹啉基荧光团的半胱氨酸双光子荧光探针合成及表征 | 第46-51页 |
| 4.1. 引言 | 第46页 |
| 4.2. 实验部分 | 第46-48页 |
| 4.2.1 实验试剂 | 第46-47页 |
| 4.2.2 实验仪器 | 第47页 |
| 4.2.3 合成路线 | 第47页 |
| 4.2.4 合成步骤及表征 | 第47-48页 |
| 4.2.5 探针光谱性质测定 | 第48页 |
| 4.3. 结果与讨论 | 第48-50页 |
| 4.3.1 探针的荧光光谱 | 第48-49页 |
| 4.3.2 反应时间优化 | 第49-50页 |
| 4.3.3 探针选择性 | 第50页 |
| 4.4. 本章小结 | 第50-51页 |
| 第5章 喹啉基双光子荧光探针的设计及展望 | 第51-53页 |
| 5.1. 引言 | 第51页 |
| 5.2. 讨论与总结 | 第51-52页 |
| 5.3. 展望 | 第52-53页 |
| 参考文献 | 第53-69页 |
| 致谢 | 第69-71页 |
| 附录A 攻读学位期间所发表的学术论文目录 | 第71-73页 |
| 附录B 部分化合物~1H NMR图谱、~(13)C NMR图谱、HRMS | 第73-78页 |
